[发明专利]一种能提高烟草抗旱的转录因子NtMYB44a及其定点突变方法与应用有效
申请号: | 201910627648.4 | 申请日: | 2019-07-12 |
公开(公告)号: | CN110194792B | 公开(公告)日: | 2021-09-14 |
发明(设计)人: | 姚恒;杨大海;谢贺;白戈;童治军;张谊寒;陈学军;肖炳光;李永平 | 申请(专利权)人: | 云南省烟草农业科学研究院 |
主分类号: | C07K14/415 | 分类号: | C07K14/415;C12N15/29;C12N15/82;A01H5/00;A01H6/82 |
代理公司: | 昆明知道专利事务所(特殊普通合伙企业) 53116 | 代理人: | 姜开侠;姜开远 |
地址: | 650021*** | 国省代码: | 云南;53 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 提高 烟草 抗旱 转录 因子 ntmyb44a 及其 定点 突变 方法 应用 | ||
本发明公开了一种能提高烟草抗旱的转录因子NtMYB44a及其定点突变方法与应用。所述的能提高烟草抗旱的转录因子NtMYB44a的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。编码蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO:2所示;采用CRISPR/Cas9技术,设计了2个sgRNA靶位点,分别位于距离终止密码子(TGA)236bp和230bp,通过转化烟草造成该基因在目标位点的突变;通过自交收种后,筛选得到了NtMYB44a基因定点纯合突变后代。生理实验表明突变烟草叶片失水速率显著慢于野生型的对照植株。干旱胁迫后的覆水实验表明突变植株存活率显著高于野生型植株。本发明表明利用CRISPR/Cas9技术针对NtMYB44a基因尾部(即距离NtMYB44a翻译终止密码子(TGA)200bp至300bp序列范围)所创制出的NtMYB44a基因纯合突变烟草材料比野生型烟草具有更高的抗旱能力。本发明为NtMYB44a基因及其编码蛋白应用于烟草抗旱育种提供基因资源与技术支持。
技术领域
本发明属于烟草遗传技术领域,具体涉及一种能提高烟草抗旱的转录因子NtMYB44a及其定点突变方法与应用。
背景技术
MYB44 是植物典型的 R2R3-MYB 转录因子,在不同物种间基因结构保守,可转录调控植物对干旱和盐等胁迫的抵抗能力。研究表明,MYB44是水杨酸(salicylicacid,SA)、脱落酸(abscisic acid,ABA)、茉莉酸(jasmonic acid,JA)和乙烯(ethylene,ET)、生长素(Auxin)和赤霉素(gibberellin,GA)信号途径共同的转录因子,参与上述激素信号途径的交互作用,对微生物、真菌、钙离子信号、盐和干旱等生物和非生物胁迫有所响应。
植物体内ABA 含量增加积累与植物抗旱强弱有关,其含量可作为抗旱性鉴定的评价指标之一。ABA在干旱等逆境胁迫下的生理功能主要有两方面:一是ABA在水分平衡方面的作用主要是通过控制气孔开度来实现的,二是细胞耐受功能则是通过一系列胁迫相关基因的表达实现的。用ABA处理拟南芥后,AtMYB44转录水平明显增加,并且在导管和叶片气孔中高效表达。MYB44在ABA信号转导中的作用机制为脱落酸信号受体PYL8与MYB77和MYB44形成蛋白复合体,促进MYB44结合下游靶标基因启动子区的MBSI基序,从而调控ABA响应基因表达。此外,At-MYB44通过抑制ABA的负调控因子PP2Cs(丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶2C家族)来对ABA进行正向调控。Li等2014采用免疫共沉淀技术(pull down)和酵母双杂交技术证明AtMYB44转录因子N端54-105氨基酸与ABA受体RCAR1具有直接互作作用。
目前对CRISPR/Cas系统的优化改进的研究成果不断涌现,主要集中在利用CRISPR/Cas系统实现多个基因同步编辑/敲除和提高CRISPR/Cas系统的精确性,减少脱靶率,从而降低细胞毒性和潜在风险。
发明内容
本发明的第一目的在于提供一种能提高烟草抗旱的转录因子NtMYB44a;第二目的在于提供所述的能提高烟草抗旱的转录因子NtMYB44a的定点突变方法;第三目的在于提供所述的能提高烟草抗旱的转录因子NtMYB44a的应用。
本发明的第一目的是这样实现的,所述的能提高烟草抗旱的转录因子NtMYB44a的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。
本发明的第二目的是这样实现的,包括以下步骤:
A、烟草叶片cDNA合成:提取烟草叶片总RNA,反转录得到第一链cDNA;
B、PCR扩增:以烟草叶片cDNA为模板,根据NtMYB44a基因序列设计引物,进行PCR扩增,回收和纯化PCR扩增产物,并测序;
C、NtMYB44a基因的CRISPR/Cas9载体的构建:根据基因序列设计靶位点sgRNA序列,合成sgRNA引物序列,将sgRNA序列通过酶切和连接进pORE-CRISPR/Cas9植物表达载体;
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