[发明专利]一种CRISPR/Cas9基因编辑体系的建立方法及其应用在审
| 申请号: | 202010984936.8 | 申请日: | 2020-09-17 |
| 公开(公告)号: | CN112029770A | 公开(公告)日: | 2020-12-04 |
| 发明(设计)人: | 朱志贤;于翠;董朝霞;莫荣利;李勇;邓文;胡兴明 | 申请(专利权)人: | 湖北省农业科学院经济作物研究所 |
| 主分类号: | C12N15/113 | 分类号: | C12N15/113;C12N15/80;C12N15/66 |
| 代理公司: | 北京方圆嘉禾知识产权代理有限公司 11385 | 代理人: | 程华 |
| 地址: | 430064 湖*** | 国省代码: | 湖北;42 |
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| 摘要: | |||
| 搜索关键词: | 一种 crispr cas9 基因 编辑 体系 建立 方法 及其 应用 | ||
1.一种CRISPR/Cas9基因编辑体系的建立方法,其特征在于,包括以下步骤:
步骤1、sgRNA设计
根据前期克隆获得菌核形成相关基因Mmk1的序列如SEQ:ID:NO:1所示,并利用在线工具CRISPRdirecthttp://crispr.dbcls.jp/,设计该基因的靶点序列如SEQ:ID:NO:2-SEQ:ID:NO:3所示;
步骤2、CRISPR/Cas9-Mmk1-sgRNA载体的构建
各取10μm正向M1-F和10μm反向引物M1-R10μl,混匀,94℃5min,5℃/2min的速率降温至50℃,10℃/2min降温至10℃合成双链DNA;用T4多聚核苷酸激酶对sgRNA合成的双链引物进行退火添加磷酸基团,反应体系15μl:合成的双链DNA 8μl,10×T4 PNK buffer 1.5μl,ddH2O 4.5μl,T4 PNK 1μl,反应程序:37℃30min,65℃20min,-20℃保存;用限制性核酸内切酶Fast digest ESP3I酶切载体U6-2,酶切体系50μl:质粒DNA 5μg,ESP3I酶5μl,10×buffer 5μl,β-巯基乙醇稀释100倍2.5μl,37℃5min,65℃10min;并用DNA回收试剂盒回收DNA;最后将sgRNA寡聚核苷酸片段与载体用T4 Ligase进行连接,反应体系10μl:T4连接酶Buffer 1μl,T4连接酶1μl,CRISPR/Cas9质粒载体U6-24μl;sgRNA插入片段4μl,其中载体和插入片段摩尔浓度比在1∶3-10范围;反应条件:22℃连接1h;
步骤3、转化并筛选阳性克隆
从-80℃冰箱中取出大肠杆菌JM109感受态细胞悬液100μl的1.5ml离心管,放置冰上解冻10min,加入10μl连接产物,轻柔混匀后于冰上放置30min,42℃水浴90s,迅速置于冰上冷却2min,向离心管中加入890μl LB液体培养基,轻柔混匀后在37℃水平摇床中震荡培养过夜;将菌液在吸取100μl菌液涂布于含有AMP、IPTG和X-gal的抗性的LB固体培养基平板上37℃培养过夜;挑取白色克隆到含有相应浓度筛选药剂的LB液体培养基中,于37℃水平摇床中培养过夜,将菌液加入到1.5ml离心管,5000rpm,离心10min,去上清,于沉淀物中加入200μl的无菌去离子水,混匀,悬浮沉淀,悬浮液在100℃沸水中水浴加热10min,然后4℃放置5min,12000rpm,离心20min,取1μl上清液作为PCR的模板,采用设计的引物进行菌落PCR验证,所述引物序列如SEQ:ID:NO:4-SEQ:ID:NO:5所示,反应在50μl PCR体系中进行,包括2×Es Taq Mastermix 25μl,10μm引物各1μL,模板DNA 1μl,加入ddH2O至体系体积达50μl;PCR扩增参数为:95℃4min;94℃1min,55℃1min,72℃1min,35个循环;72℃10min,然后将阳性克隆和送样至擎科生物公司测序,与载体U6-2用Clustal X version 1.83进行比对发现靶标序列已经插入到阳性克隆中;
步骤4、原生质体的制备
将Cb1-6-24放至PDB培养基中,25℃,180rpm培养4d,称取三种裂解酶:锅牛酶、纤维素酶和溶菌酶各0.2g,将混合酶溶解在10ml的0.7M Nacl溶液中,用0.45μm的细菌滤器过滤酶液;将酶与三层擦镜纸过滤的菌丝体混合,30℃,100rpm,孵育3h,将裂解液用三层擦镜纸过滤,并用0.7M Nacl冲洗,收集滤液,10℃,5000rpm离心10min,弃上清留原生质体沉淀,用6ml 0.7M Nacl重悬原生质体沉淀并分装到2ml离心管中,10℃,5000rpm离心2min,弃上清,每管原生质体再用1ml的STC溶液重新悬浮,之后10℃,5000rpm离心2min,弃上清,最后用1ml的STC溶液重悬,并逐滴加入250μl的SPTC溶液,混匀后冰上放置待用;
步骤5、原生质体转化
用质粒提取试剂盒提取重组质粒,将80μl重组质粒的DNA和5μL的肝素钠5mg/mL加入1.25ml原生质体悬浮液中,轻轻混匀,冰上静置30min;逐滴加入1/3体积的SPTC溶液,轻轻混匀,在室温静置20min;将混合液转移到50ml玻璃三角瓶中,加入20ml的RM培养液,室温静置2小时后25℃,100rpm恢复培养过夜;将恢复好的1ml混合液涂布在含有30μg/mlAmp抗生素的PDA培养基中,25℃培养至长出转化子后,并挑取转化子接种在含有Amp 100μg/ml抗生素的PDA培养基中上进行再筛选;用DNA提取试剂盒提取转化子和菌株Cb1-6-24的基因组DNA,设计引物对转化子进行验证,所述引物序列如SEQ:ID:NO:6-SEQ:ID:NO:7所示,反应在50μl PCR体系中进行,包括2×Es Taq Mastermix 25μl,10μm引物各1μL,模板DNA 1μl,加入ddH2O至体系体积达50μl;PCR扩增参数为:95℃4min;94℃1min,52℃1min,72℃1min,35个循环;72℃10min,然后送样至擎科生物公司测序,测序后序列比对结果表明,随机挑选5株转化子进行验证,所测得的靶位点序列附近均出现不同形式的突变。
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