[发明专利]一种检测牛CART活性肽与牛卵泡颗粒细胞膜受体是否结合的方法有效
| 申请号: | 202010914572.6 | 申请日: | 2020-09-03 |
| 公开(公告)号: | CN112034188B | 公开(公告)日: | 2023-10-20 |
| 发明(设计)人: | 李鹏飞;朱芷葳;杜海燕 | 申请(专利权)人: | 山西农业大学 |
| 主分类号: | G01N33/74 | 分类号: | G01N33/74;G01N33/543;G01N21/31 |
| 代理公司: | 西安恒玖慧通知识产权代理事务所(普通合伙) 61281 | 代理人: | 韩红芳 |
| 地址: | 030801 山*** | 国省代码: | 山西;14 |
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| 摘要: | |||
| 搜索关键词: | 一种 检测 cart 活性 卵泡 颗粒 细胞膜 受体 是否 结合 方法 | ||
1.一种检测牛活性肽与牛卵泡颗粒细胞膜受体是否结合的方法,其特征在于:包括如下步骤:
S1、合成牛基因,亚克隆构建到表达载体上,哺乳系统表达目的蛋白,纯化后去内毒素,并标记生物素,制备出生物素标记的活性肽;
S2、牛卵泡颗粒细胞膜碎片的获取;
S3、通过单样本分子互作分析仪检测是否出现结合信号,从而检测牛卵泡颗粒细胞膜是否存在CART受体。
2.如权利要求1所述的一种检测牛活性肽与牛卵泡颗粒细胞膜受体是否结合的方法,其特征在于:所述步骤S1具体包括如下步骤:
S11、取PCR管并标记,依次加入4 同源重组酶,5目的基因片段,1 线性化载体;吹打均匀后,置于预热的50℃ PCR仪中孵育45 min,得重组质粒;
S12、检测所得重组质粒的浓度及纯度,对纯度符合要求的质粒进行酶切,配制如下酶切体系:6 I内切酶,10 10×,50 质粒;
将酶切混合物放入37℃水浴锅中酶切30 min,并混匀,酶切后,根据质粒体积加入0.75倍异丙醇,混匀,4℃离心30 min后弃上清,加入1 mL 70%乙醇4 ℃离心5 min,进行回收;
S13、将质粒瞬时转染到细胞中,收集培养基和细胞,直至存活率下降到50%以下,具体操作如下:
(1)转染前一天,接种27×106个细胞到完全培养基中培养;
(2)稀释15 DNA 至1.5 mL 完全培养基中,轻柔混匀,另稀释45 PEI转染试剂至1.5 mL完全培养基中,轻柔混匀,各自室温孵育5 min;
(3)将稀释后的PEI 加入稀释后的DNA中,此时转染混合物总体积为3 mL,轻柔混匀,室温孵育25 min;
(4)将3 mL转染混合物加入27 mL细胞悬液中,轻柔混匀,37 ℃, 5% CO2, 130 rpm条件下培养10 d,至细胞活率降到50%以下收样;
S14、CART蛋白160 mL放大及纯化
(1)对表达结构进行无内毒素DNA制备,采用去内毒素质粒提取试剂盒;
(2)亲和蛋白A树脂的纯化;
(3)清洗树脂:根据树脂用量选择10倍树脂体积 binding buffer (PBS pH 7.5)清洗;
(4)上样:将收集的上清样品过柱,此过程缓慢进行,加速时必须控制速度:1 s/滴;
(5)淋洗:用PBS pH 7.5淋洗结合液,结合液通过自身重力向下滴,控制速度在1 s/滴;
(6)用20 mM柠檬酸pH 2.7缓冲液进行洗脱,缓慢进行;
(7)中和缓冲液:1 M Tris-HCl pH 9.0,每个淋洗的样品取样跑SDS-PAGE胶,IN 和FT上样量为10,其他上样量为20 ;
(8)将E1 - E6组分混合,进行缓冲液交换和浓缩,蛋白终浓度为:1.7 mg/mL,总蛋白量:500 ;
S15、生物素标记CART
将生物素使用DMF溶解,浓度20 mg/mL,并将抗体溶解于PBS,使用CBS调至pH 8.5,终浓度1-10 mg/mL;
按每mg抗体加5 生物素溶液,室温避光搅拌2 h,收集反应物使用PBS透析过夜,中途更换PBS 3-4次,经生物素标记后终浓度:0.1 mg/mL,总蛋白:495 。
3.如权利要求1所述的一种检测牛CART活性肽与牛卵泡颗粒细胞膜受体是否结合的方法,其特征在于:所述步骤S2具体包括如下步骤:
收集牛卵泡颗粒细胞,600 g离心5 min,4 ℃PBS缓冲液漂洗细胞两次,加入1 mL冷的细胞裂解液并收集细胞,移至EP管,反复吹打,1000 g 3min离心,将上清移至另一新EP管,21,460 g 1 h 4℃离心,收集沉淀,加入1 mL PBS后反复吹打,得到细胞膜碎片,所述细胞裂解液包括50 mM Hepes、150 mM NaCl、3 mM MgCl2。
4.如权利要求1所述的一种检测牛CART活性肽与牛卵泡颗粒细胞膜受体是否结合的方法,其特征在于:所述步骤S3具体包括如下步骤:
在BLItz Pro 1.3系统中操作,反应体积300 μL,实验方法如下: (1) 基线平衡:将SA传感器放入PBS中浸湿10 min,在系统中进行第一次基线平衡,时间60 s;(2) CART固定:将传感器伸入含有生物素标记的终浓度为0.1 μg/μL的CART溶液中,时间300 s;(3) 基线平衡:将传感器伸入PBS中进行第二次基线平衡,时间240 s;(4) 结合测定:将传感器移至包含膜碎片的PBS溶液中进行结合测定,时间300 s;(5) 蛋白解离:将结合后的探针再次转移到PBS中进行解离实验,时间300 s。
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