[发明专利]一种人体细胞外泌体工业化制备方法、质量研究及应用在审
| 申请号: | 201911160687.4 | 申请日: | 2019-11-23 |
| 公开(公告)号: | CN112831464A | 公开(公告)日: | 2021-05-25 |
| 发明(设计)人: | 路春光 | 申请(专利权)人: | 路春光 |
| 主分类号: | C12N5/0775 | 分类号: | C12N5/0775;A61K35/51;A61K35/12;A61K8/98;A61P19/00;A61P9/00;A61P1/00;A61P1/16;A61P37/02;A61P17/06;A61P25/00;A61P17/02;A61P3/10;A61P9/10 |
| 代理公司: | 暂无信息 | 代理人: | 暂无信息 |
| 地址: | 130031 吉林省长*** | 国省代码: | 吉林;22 |
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| 摘要: | |||
| 搜索关键词: | 一种 人体 细胞 外泌体 工业化 制备 方法 质量 研究 应用 | ||
1.一种优化的从胎儿附属物(脐血、脐带、胎盘等)、毛囊、脂肪和牙髓、跟腱等中分离培养间充质干细胞(MSC);3D培养间充质干细胞;从人外周血和脐血中分离制备DC、CIK、NK、TCM、TSCM,CAT-T、TCR-T、UCART、TIL、Treg等免疫细胞;从诱导多能干细胞和胚胎干细胞中分离制备外泌体的方法及应用:
(1)人体细胞来源外泌体的制备:
用本人发明的MSC培养试剂盒(申请号2019107271592)培养人脐带间充质干细胞,血清培养体系下细胞的融合度达到70-80%时更换为无血清培养基继续培养24-48h,收集培养上清液;
(2)超滤法:
1)收集细胞上清液分装至50ml离心管,1500rpm,10min;
2)离心结束后,用20ml注射器吸取上清,用0.45μm 针头滤器过滤;
3)取新的20ml注射器吸取过滤后的液体,用0.22μm 针头滤器过滤;
4)过滤液加入超滤管内,3000g、15min;
5)离心结束后,去除外管液体,并往内管添加过滤液,3000g,根据情况调整离心时间,单次不超过2H,直到理想浓度体积;
6)收集内管的浓缩液并转移至新的15ml离心管,-80℃冻存备用;
(3)超速离心法:
1)收集浓缩液分装至50ml离心管;
2)300g离心10min,去除完整细胞;
3)2000g离心20min,进一步去除死细胞和杂质;
4)10000g离心30min,去除细胞碎片;
5)100000g离心70min,弃上清,沉淀用50ul PBS重悬;
(4)外泌体质量控制
电镜NanoSigh粒径分析显示,外泌体呈典型的杯状结构且粒径大小主要为100nm左右;将获得的外泌体蛋白抽提后进行Western Blotblot检测,其表达外泌体特异性蛋白Alix,CD63及CD9;内毒素检测阴性、真细菌、支原体、细胞内、外病毒因子检测、细胞因子残留量、BSA残留量和抗生素残留量合格。
2.应用权利要求1所述的人脐带MSC来源外泌体工业化生产和质量控制标准其特征在于,包括以下步骤:
脐带间充质干细胞的分离和培养方法:
MSC细胞培养添加剂MSC-配置,其中含有2-50ng/mL bFGF和2-50ng/ml EGF;
配置完全培养液的配制:MSC- 中添加1/1000 MSC-、2mM GlutaMAX™-I和10%Prime FBS,取10ml包被150cm培养皿;
用尖头直剪将脐带剪成约2cm长度的小段,至少清洗3次,取最后一次清洗液20ml做菌检;
转移脐带组织至一新的培养皿中,将脐带一端沿静脉腔内剪个切口,用组织镊沿切口方向静脉血管边缘纵向撕开,用组织镊去除羊膜,小心地将1根静脉血管和2根动脉血管剖离,翻转脐带,撕去上皮,得到的华通氏胶用手术刀切成边长 3-5mm 之间的小块,将 3-5mm之间的组织小块均匀的种植在150cm培养皿中,组织块之间的间距为 1cm左右,放入培养箱中,48H后补液至30ml,至第七天静止不动;
第七天全量换液,经过11-15天的原代培养,收获原代MSC细胞,P0细胞数量达到约1x107,P0传P1代,细胞扩增倍数不应低于7倍,低于7倍说明原代细胞有老化现象;
细胞分为种子细胞库和工作细胞库二级库,传至P2代时收获种子细胞,内毒素和流式表型检测合格后入种子细胞库;
传代培养至P5代工作细胞入待检区,待细胞数量、活性、表型、内毒素、真细菌、支原体、STR分型检测、核型分析、细胞内、外病毒因子检测和诱导分化能力检测合格后入工作细胞库;
每次细胞传代前24-48小时换成无血清培养基,传代和收获后收集无血清细胞上清液,用于制备外泌体。
3.应用权利要求2所述的人脐带间充质干细胞为P1-P10代培养的间充质干细胞。
4.应用权利要求2所述的人脐带间充质干细胞,细胞汇合度达到70%-80%时更换为无血清培养基,24-48H后收集无血清细胞上清液;上清液浓缩倍数为2-100倍。
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