[发明专利]在水稻基因打靶中识别特异位点的PL‑LbCpf1‑RVR基因及其应用在审
申请号: | 201710505886.9 | 申请日: | 2017-06-28 |
公开(公告)号: | CN107099544A | 公开(公告)日: | 2017-08-29 |
发明(设计)人: | 秦瑞英;杨剑波;许蓉芳;李浩;李莉;魏鹏程;李娟 | 申请(专利权)人: | 安徽省农业科学院水稻研究所 |
主分类号: | C12N15/55 | 分类号: | C12N15/55;C12N15/82;A01H4/00;A01H5/00 |
代理公司: | 北京律谱知识产权代理事务所(普通合伙)11457 | 代理人: | 黄云铎 |
地址: | 230031 *** | 国省代码: | 安徽;34 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 水稻 基因 打靶 识别 特异 pl lbcpf1 rvr 及其 应用 | ||
技术领域
本发明涉及生物技术和植物基因工程技术领域。具体而言,本发明涉及一种在基因打靶中识别特异位点的PL-LbCpf1-RVR基因及其在水稻基因打靶方面的应用。
背景技术
CRISPR/Cas基因编辑系统已成为植物功能基因研究和分子育种的重要手段。传统的CRISPR/Cas系统多使用Cas9蛋白作为核酸内切酶在植物基因组目标靶点造成定点切割,从而引入位点特异性突变。最近,从细菌中发现了另一种Cas蛋白Cpf1同样具有核酸内切酶活性。相对于Cas9蛋白, Cpf1在剪切原理和编辑模式上具有一些特点。例如:Cas9识别3’端富含胞嘧啶的PAM(Protospacer adjacent motif)序列,而Cpf1则识别5’端富含胸腺嘧啶的PAM序列;Cas9通常在PAM的5’上游的近端造成平末端DNA切割,而Cpf1在PAM的下游远端造成粘末端切割;Cas9只具有DNA剪切活性,而Cpf1既可以剪切DNA也可以加工RNA;Cas9在靶向编辑时需要一段较长的人工RNA序列,而Cpf1则只需要较短的crRNA序列即可完成靶向。
目前植物中最为常用的Cpf1来源于毛螺科菌(Lachnospiraceae bacterium)ND2006的LbCpf1。LbCpf1可有效识别基因组中的TTTV (V=A/C/G)序列作为PAM,从而靶向其下游序列。相对于Cas9识别的 NGG PAM,LbCpf1可编辑基因数量有限。
但是,目前还没有一种通用可行的提高LbCpf1可编辑位点数量并且能够保证LbCpf1基因在作物基因打靶中的突变效率的方法,而且现有的高突变效率的LbCpf1基因数量有限。因此,能够提供更多的在作物基因打靶中提供更多编辑位点的LbCpf1基因是人们迫切希望的,但是这样的基因往往是可遇而不可求的,没有成形的理论或方法能够为人们找到这样的基因提供理论依据。
发明内容
针对上述问题,本发明希望提供一种在作物基因打靶中识别特异位点的LbCpf1-RVR基因。
具体而言,在第一个方面,本发明提供一种新的PAM识别的 PL-LbCpf1-RVR基因,命名为PL-LbCpf1-RVR,所述PL-LbCpf1-RVR基因至少包含如序列表中SEQ ID NO.1所示的核苷酸序列。本发明的 PL-LbCpf1-RVR基因在水稻转基因培育过程中能够识别更多可编辑位点。
优选地,该基因由SEQ ID NO:1所示的核苷酸序列构成。相对于现有的LbCpf1基因而言,本发明所获得的PL-LbCpf1-RVR基因的编辑范围更宽。
在第二个方面,本发明提供一种含有所述PL-LbCpf1-RVR基因的植物表达载体。该植物表达载体的构建方法是利用NotI/SacI酶切位点,用 NotI/SacI酶切pHUN600载体并回收,由于合成的PL-LbCpf1-RVR序列两端加有NotI/SacI酶切位点,可以利用T4连接酶将PL-LbCpf1-RVR连接到pHUN600载体,得到植物表达载体pHUN-RVRPL-LbCpf1-RVR(pHUN 6b11)。
另一方面,本发明在表达载体的基础上,根据实验的实际需要,构建相应的基因打靶载体。
另一方面,本发明提供一种表达盒,其特征在于,所述表达盒中包含上述的PL-LbCpf1-RVR基因。
另一方面,本发明提供一种上述基因、表达盒或载体的应用,其特征在于,所述应用包括利用所述PL-LbCpf1-RVR基因完成水稻体内DNA双链的剪切,并在自身修复系统的作用下,获得带有突变位点的转基因植物或植物部分。
在另一个方面,本发明提供一种利用pHUN-PL-LbCpf1-RVR(pHUN 6b11)表达载体(其含有所述PL-LbCpf1-RVR基因),在表达载体的基础上只需进行简单的退火、酶切连接作用即可获得特异基因的打靶载体(pHUN 6b11-DL),将打靶载体导入水稻细胞的方法,包括下述步骤:
(1)将水稻种子去壳、灭菌后将胚分离出来,置于愈伤组织诱导培养基上以产生次级愈伤组织;
(2)将次级愈伤组织转移至新的愈伤组织诱导培养基预培养;
(3)将步骤(2)中获得的愈伤组织与携带PL-LbCpf1-RVR的打靶载体(pHUN 6b11-DL)的农杆菌接触15分钟;
(4)将步骤(3)的愈伤组织转移到上垫上三张无菌滤纸(加入 2.5-3.5mL农杆菌悬浮培养基)的培养皿中,21-23℃培养48小时;
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