[发明专利]一种DC细胞与CIK细胞的共培养方法在审

专利信息
申请号: 201410733771.1 申请日: 2014-12-06
公开(公告)号: CN104450616A 公开(公告)日: 2015-03-25
发明(设计)人: 闫敬武;杜成德;程思博;孟艳芬 申请(专利权)人: 山东世博金都药业有限公司
主分类号: C12N5/0784 分类号: C12N5/0784;C12N5/0783
代理公司: 淄博佳和专利代理事务所 37223 代理人: 张雯
地址: 255086 山*** 国省代码: 山东;37
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摘要:
搜索关键词: 一种 dc 细胞 cik 培养 方法
【说明书】:

技术领域

一种DC细胞与CIK细胞的共培养方法,属于细胞培养技术领域。

背景技术

CIK生物免疫治疗作为21世纪治疗肿瘤的首选方案,广泛用于各种实体瘤的治疗。CIK生物免疫治疗具备:1)增殖,可以在短时间内大量扩增;2)CIK细胞来源于自身对人体没有任何毒副作用;3)杀瘤谱广,对绝大多数肿瘤都具备杀伤效力;4)杀瘤活性高,且不受CSA、FK506等免疫抑制剂的影响;5)可有效抵抗肿瘤细胞引发的凋亡机制。树突状细胞,简称DC细胞, 是机体功能最强的专职抗原递呈细胞,它能高效地摄取、加工处理和递呈抗原,增殖细胞毒性T淋巴细胞CTL,从而介导强大的特异性抗肿瘤细胞免疫。

DC细胞是机体免疫应答的始动者,能够诱导持久有力的特异性抗肿瘤免疫反应;CIK细胞可通过非特异性免疫杀伤作用清除肿瘤患者体内微小残余病灶,所以负载肿瘤抗原的DC与CIK的有机结合,即DC-CIK细胞,能产生特异性和非特异性的双重抗肿瘤效应。DC细胞与CIK细胞共培养后,提高了细胞的增殖速度和杀伤活性,且使其对肿瘤细胞的杀伤作用更具特异性。然而,现有的DC-CIK共培养,是将收获的DC细胞添加到CIK培养体系中,从而通过DC细胞与CIK细胞的结合,将DC细胞携带的抗原信息提成给CIK细胞;但是CIK的培养环境不利于DC细胞的生长,不能有效的长时间维持DC细胞的活性,从而影响DC细胞提呈抗原的效率。DC细胞成熟慢、生存期短,CIK细胞的扩增培养时间较长,两种细胞共培养后存在培养时间不同步的问题,导致所获的DC-CIK细胞活性降低。目前迫切需要一种可延长DC细胞生存期的DC-CIK共培养方法。

发明内容

本发明要解决的技术问题是:克服现有技术的不足,提供一种DC细胞与CIK细胞的共培养方法,该方法可明显延长DC细胞的生存期,长时间保持DC细胞的活性。

本发明的技术方案为,该DC细胞与CIK细胞的共培养方法,由如下步骤组成: 1)提取单个核细胞、2)CIK细胞培养、3)DC细胞培养、4)DC细胞和CIK细胞混合培养、5)扩增培养;

其中,步骤4)DC细胞和CIK细胞混合培养具体操作如下:

4.1)将培养瓶中的DC培养基混匀后,转移至无菌离心管;然后向培养瓶中加入10ml经4 ℃预冷的生理盐水,晃动培养瓶,并用10ml 移液管吹打瓶底的细胞,完毕后将培养瓶内液体移至无菌离心管,最终在离心管中得到用生理盐水悬浮的DC细胞,即DC细胞悬液;

4.2)将收集好的DC细胞悬液在离心机内,室温条件下离心10~20分钟;离心,弃上清液,继续用生理盐水重悬细胞,获得一次重悬细胞液,并对一次重悬细胞液进行取样计数;

4.3)从层流室的4℃冰箱中取出培养基,静置待培养基恢复至37℃;将步骤4.2)重悬细胞液进行离心,离心后弃上清液,用10ml  培养基重悬细胞,获得二次重悬细胞液,并对二次重悬细胞液进行取样计数;

4.4)吸取1.0×106个DC细胞、1.0×108个CIK细胞,在添加有培养基的培养体系中混合培养,培养体系为50ml ;按照50 ~100ng/ml的浓度向培养体系中补加2500 ng~5000ng的因子GM-CSF,然后置于37℃、体积分数5~6% 的CO2培养箱继续培养;培养12小时后,再次添加2500ng~5000ng的因子GM-CSF,置于37℃、体积分数5~6% 的CO2培养箱继续培养。

优选的,所述步骤1)提取细胞采用如下操作:

1.1)转移外周血:采集患者50~80ml 外周血,并转移到无菌离心管中,平均每管20~40ml  ;

1.2)铺层加样:将血样与生理盐水按1:1的体积比混合均匀,并缓慢加入盛有室温的5~20ml 人淋巴细胞分离液的无菌离心管中,配平后进行离心; 

1.3)提取单个核细胞:离心完毕后,离心管内出现分层,吸取血浆生理盐水层弃之,直至距白膜层5毫米处;将红细胞层之上的所有液体转移至无菌离心管中,按细胞悬液与生理盐水体积比1:1向无菌离心管中补充生理盐水,混匀;

1.4)洗涤Ⅰ:将步骤1.3)无菌离心管中所得的细胞进行离心,弃上清液,用生理盐水重悬细胞,混匀;

1.5)洗涤Ⅱ:将所得细胞收集到一支离心管中,加生理盐水至50ml ,充分混匀,离心,弃上清液;

1.6)洗涤Ⅲ:将所得细胞收集到一支离心管中,补生理盐水至40ml ,充分混匀,取样计数,离心,弃上清液,即得提取获得外周血单个核细胞。

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