[发明专利]一种末端脱氧核苷酰转移酶活性测定方法无效
申请号: | 201410502145.1 | 申请日: | 2014-09-28 |
公开(公告)号: | CN104293883A | 公开(公告)日: | 2015-01-21 |
发明(设计)人: | 徐晓昱;王静 | 申请(专利权)人: | 南京诺唯赞生物科技有限公司 |
主分类号: | C12Q1/48 | 分类号: | C12Q1/48 |
代理公司: | 南京正联知识产权代理有限公司 32243 | 代理人: | 王素琴 |
地址: | 210014 江苏省*** | 国省代码: | 江苏;32 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 末端 脱氧 核苷 转移酶 活性 测定 方法 | ||
技术领域
本发明属于生化技术领域,具体来说涉及一种末端脱氧核苷酰转移酶活性测定方法。
背景技术
末端脱氧核苷酰转移酶(terminal deoxynucleotidyl transferase,TdT)是一种特殊的DNA聚合酶。TdT可不依赖模板,催化脱氧核苷三磷酸(dNTP),逐个聚合至单链或双链DNA片段的3’-OH端上。该酶特异分布于哺乳类动物的胸腺、骨髓及某些类型的白血病患者的恶性细胞中,通过测定其活性,可用于白血病的诊断及预后。(Rudzka E et al., Folia Haematol Int Mag Klin Morphol Blutforsch. 1985;112(6):864-71)(Hutton JJ et al., Blood. 1982 Dec;60(6):1267-76.)。因此,测定体内的TdT活性具有十分重要的临床诊断价值。
TdT也是基因工程技术以及生命科学研究中一种重要的工具酶。在细胞凋亡的过程中,染色体的DNA被内源核酸内切酶有规律的降解成长度约为180-200bp的整倍数的片段,产生游离的3’-OH末端。TdT可在这些末端上掺入荧光标记的dUTP,因此可在荧光显微镜下直接观察到凋亡细胞。这种被称为TUNEL (TdT mediated dUTP Nick End Labeling)的方法是目前原位检测细胞凋亡最重要、最准确的方法,而TdT酶是TUNEL实验中的核心。目前商品化的TUNEL试剂盒中通常采用的是基因工程重组表达的TdT酶,其质量、活性决定了TUNEL结果的好坏。如果一个反应中加入的TdT酶活性过高,会导致非特异性染色;而加入的TdT酶活性过低则会导致染色失败。因此,准确测定重组TdT酶的活性,保证批次活性的稳定性,对于TUNEL试剂盒的质量具有至关重要的意义。
经典的TdT酶活力测定法采用放射性底物掺入法,即采用以32P标记的dATP为底物,经TdT催化使其掺入到oligo (dA)25上,其反应式如下:
n[α-32p]-dATP + oligo (dA)25 oligo (dA)25([α-32p]-dAMP)n + nppi
通过测定酸不溶性产物中放射性同位素的量,计算出TdT酶的活性。这种方法灵敏度虽高,但受标记物质量所限,且操作过程繁琐,易产生放射性污染。
张华等(生物化学与生物物理进展,1990,17:387-389)将放射性底物[α-32p]-dATP替换为荧光标记底物εdATP,经TdT催化使其掺入到oligo (dA)25上,其反应式如下:
n εdATP + oligo (dA)25 oligo (dA)25(εdAMP)n + nppi
通过测定酸不溶性产物的荧光强度,计算出TdT酶的活性。这种方法无需放射性同位素操作,但其荧光标记底物εdATP无商品化试剂,需要实验者自行合成,合成难度大、周期长,质量难以控制;此外反应产物需要经过蛇毒磷酸二酯酶水解,才能测定荧光强度,操作步骤的繁琐程度更甚于放射性同位素法。
目前,以上述两种方法为代表性的TdT测活方法本质上还是通过测定掺入的标记dATP的量来计算酶活,这些方法可以统称为“掺入法”。“掺入法”的关键在于掺入产物和标记dATP(放射性同位素或荧光标记)的分离。三氯乙酸TCA可使oligo (dA)25沉淀,而标记的dATP不被沉淀;将TCA处理的产物加在whatman滤纸上,就可以实现掺入产物和标记dATP的分离。再经过洗涤、干燥、洗脱,最后测定放射性同位素或者荧光强度。因此,所有基于“掺入法”的测活方法,都存在步骤多、周期长的缺陷,难以实现高通量、自动化。
发明内容
本发明的目的是建立一种简便、快速、非放射性的TdT酶测活方法。本发明采用了一种全新的“转化法”替代传统的“掺入法”,其原理如图1所示。
具体来说,本发明的技术方案如下:
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