[发明专利]Lmx1a介导的与神经干细胞共培养诱导rASCs为DA能神经元的方法无效
申请号: | 201210543400.8 | 申请日: | 2012-12-16 |
公开(公告)号: | CN103215226A | 公开(公告)日: | 2013-07-24 |
发明(设计)人: | 周艳;李鸿钧;孙茂盛;严敏;吴晋元 | 申请(专利权)人: | 中国医学科学院医学生物学研究所 |
主分类号: | C12N5/10 | 分类号: | C12N5/10;C12N5/0793;C12N5/0775;C12N15/11;C12N15/861;C12N7/01 |
代理公司: | 昆明科阳知识产权代理事务所 53111 | 代理人: | 孙山明 |
地址: | 650118 *** | 国省代码: | 云南;53 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | lmx1a 神经 干细胞 培养 诱导 rascs da 神经元 方法 | ||
1.Lmx1a介导的与神经干细胞共培养诱导rASCs为DA能神经元的方法,包括以下步骤:
步骤(1):构建Lmx1a基因克隆及重组质粒
以Lmx1a whole transcript cDNA(NM_138396)为模板,引物为:
P1 up:5′-GCGTCGACGTACCATGCTGGACGGCCTAAAG-3′,
P1 down:5′-CGGGATCCCGCTTATCAAGATGTGAAGTAAG-3′,
通过PCR扩增获得带SalI和EcoR V酶切位点的DNA片段,将该片段插入pShuttle-CMV中,通过SalI和EcoR V双酶切鉴定,得到重组穿梭质粒pShuttleCMV-Lmx1a,测序并与理论结果一致;
步骤(2):构建与包装重组腺病毒Ad-Lmx1a
将步骤(1)重组穿梭质粒pShuttleCMV-Lmx1a先后用PmeI线形化和CIAP进行5′去磷酸化,其产物经纯化后与腺病毒基因组pAdEasy-1同时电转感受态细胞BJ-5183,得同源pAdEasy-1重组质粒,筛选阳性克隆,与pAdEasy-1成功进行同源重组的克隆能被PacI酶切出3.0kb或者4.5kb的片段;
筛选出的pAdEasy-1重组质粒经鉴定后转化XL-10(Gold),扩增、提取质粒,使质粒浓度达到0.1μg/μL,将质粒线性化后转染HEK-293细胞,使重组腺病毒质粒在HEK-293细胞中包装重组腺病毒Ad-Lmx1a,10天后细胞病变脱落呈串珠状,漂浮于上清液中,收集腺病毒颗粒;
步骤(3):将感染Ad-Lmx1a的rASCs与NSCs共培养分化为DA能神经元
(a)诱导前,取rASCs第二代细胞,接种于放有玻片且包被过多聚赖氨酸的六孔培养板,培养液为含10%FBS的L-DMEM;培养的NSCs接种于transwell小室中,培养液为含2% B27的Neural Basal培养液;
(b)以最佳MOI的Ad-Lmx1a感染rASCs,并将培养液更换为含2% B27的Neural Basal培养液,使细胞贴壁率维持在85%,三天后再换液为DMEM/F12诱导液I进行预诱导,部分细胞开始聚集;
以上DMEM/F12诱导液I由以下成分组成:
2%FBS,
1.7 μM SHH,
20 ng/mLbFGF,
6 mM β-巯基乙醇,
DMEM/F12培养基;
(c)将接种有NSCs的transwell小室放入接种有(b)的产物细胞的六孔板中,NSCs与(b)的产物细胞在含2% B27的Neural Basal培养液中共培养24h,细胞数目明显增多,3天后将诱导液换液为Neural Basal正式诱导液II,每隔3天换一次诱导液II,直至21天;
以上Neural Basal正式诱导液II由以下成分组成:
2%B27,
1.7 μM SHH,
100 ng/mLFGF-8,
20 ng/mLbFGF,
1% N2 supplement,
20 μM β-NADP,
Neural Basal培养基。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征是步骤(3)中rASCs第二代细胞的培养:
(a)氯胺酮麻醉恒河猴, 无菌条件下取6kg成年恒河猴大网膜脂肪组织1~2g,
PBS中洗涤去除残存的血迹,分离血管和纤维成分, 0.1%I型胶原酶,37℃消化1h;
(b)消化完成后,加入与I型胶原酶等体积的含10%新生小牛犊血清的L-DMEM培养液终止消化,过滤,1500 r/min离心3 min,弃上清,吸取底部沉淀用于rASCs培养;
(c)以1×106接种于T-25培养瓶中,37℃,5%CO2条件下细胞培养中培养4天,至单层贴壁细胞贴壁率接近90%时,0.25%胰蛋白酶消化,1:2传代,之后随细胞扩增至90%时,按1:2持续体外传代培养。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征是步骤(3)中NSCs的培养:
取孕14天的SD大鼠,在无菌条件下取出子宫置于预冷的Hanks缓冲液中,分离出SD胎鼠,在解剖显微镜下取腹侧中脑区,加入0.025%胰酶,37℃消化10 min,用DMEM/F12终止消化,吹匀,1500 r/min离心10 min,用含20 ng/mL bFGF和2%B27的DMEM/F12重悬细胞,接种至T-25 培养瓶,悬浮培养;
每隔48h半量换液一次,每4天1:2传代一次,待细胞团增殖换液为新鲜的含2% B27的Neural Basal培养基。
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