[发明专利]一种畜禽原代肝细胞分离、培养与鉴定的方法无效
申请号: | 201210145959.5 | 申请日: | 2012-05-13 |
公开(公告)号: | CN102643778A | 公开(公告)日: | 2012-08-22 |
发明(设计)人: | 唐胜球;江青艳;朱晓彤;董小英;罗增福;宾艳芳;周桂炫;方心灵 | 申请(专利权)人: | 韶关学院 |
主分类号: | C12N5/071 | 分类号: | C12N5/071;C12Q1/00 |
代理公司: | 韶关市雷门专利事务所 44226 | 代理人: | 周胜明 |
地址: | 512000 广东省*** | 国省代码: | 广东;44 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 畜禽 肝细胞 分离 培养 鉴定 方法 | ||
1.一种畜禽原代肝细胞分离、培养与鉴定的方法,其特征在于将螯合法与原位两步灌流法进行整合,预先脱去畜禽肝脏组织内Ca2+与Mg2+,使之尽量多地释放出原代肝细胞,通过调整培养液的添加物配方,完善其无血清培养体系,并就所获原代肝细胞进行糖原鉴定。
2.如权利要求1所述畜禽原代肝细胞分离、培养与鉴定的方法,其特征在于操作步骤是:
一、畜禽原代肝细胞的分离
畜禽手术前禁食,自由饮水过夜,颈部注射1400IU/kg剂量肝素钠抗凝,腹腔注射戊巴比妥钠(50mg/kg)麻醉动物;
将麻醉后的畜禽仰卧位保定在小动物手术台上,该手术台放在大瓷盘上,用75%酒精擦拭全身,转入超净工作台内;
无菌条件下打开腹腔,轻轻把肠道拉向躯体右侧,暴露肠系膜静脉,结扎下腔静脉两端,并在其中汇入肝门静脉方向插管,然后松开流向肝脏的一端;
进行灌流分离,首先进行消化前灌流,又分为两部分:第一部分以50ml/min的速率灌注37℃预热的灌流液,该灌流液中含有10mM HEPES、137mM NaCl、3mM KCl、3mM Na2HPO4.12H2O和5mM EDTA,待肝脏稍鼓胀时剪开上腔静脉,持续20min,然后以同样速率灌注37℃预热的灌流液,该灌流液中含10mM HEPES、137mM NaCl、3mM KCl和3mM Na2HPO4.12H2O,持续5min;
待流出的液体变清后,进行第二步消化灌流,即以20ml/min速率灌入37℃预热的灌流液,该灌流液中含有10mM HEPES、137mM NaCl、3mM KCl、3mM Na2HPO4.12H2O、5mM EDTA、5.4mM CaCl2和0.4g/L 型胶原酶,并用止血钳适当夹住已剪开的后腔静脉,使灌流液缓慢流出,15min后肝脏逐渐被消化;
触动肝脏表面呈现组织比较松软后,开始将其摘取并放入一无菌平皿中,加入50ml预冷的威廉斯(氏)介质E( Williams’ medium E)基础培养液,剔除血管、脂肪和结缔组织,剪去肝脏周边消化不完全的部分;
用镊子撕掉肝脏包膜,剪碎肝组织,大口径吸管轻轻吹打,随后分别过100目(150μm)、200目(75μm)及400目(30μm)细胞筛,所得肝细胞悬液用威廉斯(氏)介质E( Williams’ medium E)基础培养液清洗2次,再在4℃ 500rpm离心5min;
用贴壁培养液,该贴壁培养液中含有体积百分比为10%的新生牛血清、10-6 M人胰岛素、10-6 M地塞米松、10 μg/ml人转铁蛋白、10 μg/ml Vit C、双抗(100U/ml青霉素及100μg/ml链霉素,Gibco公司)的基础培养液)重悬、台盼蓝拒染法检测细胞活率、血细胞计数板计数;
二、畜禽肝原代细胞的培养
细胞计数后,用贴壁培养液将细胞悬液稀释为2~5×105 cell/ml,在直径为60ml的培养瓶中接种15ml ,接种密度为1×105 cell /cm2,在37℃、5% CO2和饱和湿度的条件下培养,4h细胞贴壁后,用生长培养液全量换液,该生长培养液中含体积百分比为10%的新生牛血清及双抗的基础培养液继续培养20h,此后,用无血清培养液、10μg/ml维生素C、0.15% BSA和双抗的Williams’ medium E基础培养液)全量换液,该无血清培养液中含5×10-7 M地塞米松、1×SITE (这是(insulin, transferrin, selenium, ethanolamine) 的缩写,也可写成ITES,Sigma-Aldrich公司,含10μg/ml牛胰岛素、5.5μg/ml人转铁蛋白、2.9×10-8M亚硒酸钠、2μg/ml乙醇胺),以后每24h更换培养液,倒置显微镜下观察肝细胞形态及生长情况;
三、畜禽原代肝细胞的糖原鉴定
取上述无血清培养液培养48 h(接种后第3 d)的肝细胞进行糖原染色鉴定,具体操作步骤如下:
吸去培养液,加入Carnoy’s液室温固定细胞15 min后弃液,加入95%酒精,5 min;
弃液,加入70%酒精15 min后弃液,加入质量百分比为0.8%的过碘酸酒精溶液氧化,10 min;
蒸馏水洗2 min后,加入Schiff’s酒精混合液,10 min;
弃液后,加入0.5%偏亚硫酸钠溶液,2 min后蒸馏水再洗2 min;
加入Ehrlich’s苏木精复染细胞核,20 min;
以0.5%盐酸酒精分色,自来水蓝化10 min;
95%酒精及100%酒精分别脱水2 min;
二甲苯透明,树胶封片,倒置显微镜下观察。
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