[发明专利]一种大花序桉的组培快繁方法有效
申请号: | 201510976324.3 | 申请日: | 2015-12-23 |
公开(公告)号: | CN105454047B | 公开(公告)日: | 2017-09-26 |
发明(设计)人: | 唐再生;苏勇;莫继有;李炳寿;李丽芳;石前;熊涛;王建忠;张磊;黎怀玲;兰俊;陈东林;梁秀莉;刘鑫;邓冬丽 | 申请(专利权)人: | 广西壮族自治区国有东门林场 |
主分类号: | A01H4/00 | 分类号: | A01H4/00 |
代理公司: | 北京科亿知识产权代理事务所(普通合伙)11350 | 代理人: | 罗保康 |
地址: | 532108 广西壮*** | 国省代码: | 广西;45 |
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摘要: | 本发明公开了一种大花序桉的组培快繁方法,该方法采用大花序桉优良家系的优良单株,伐倒后促生萌芽,利用萌芽作为外殖体,以带有潜伏芽的茎段离体诱导无菌芽,无菌芽的获得,不经过愈伤组织成苗途径,而是直接由外植体茎段萌生侧芽或不定芽,经过对无菌芽进行继代增殖培养、生根培养和生根苗移栽,获得再生植株。本发明的大花序桉组培快繁方法,操作难度较低、无菌芽繁殖体系生长稳定,重复性良好,可反复多代规模扩繁,剪切芽苗生根培养后,生根率较高,已具备推广价值,生根小苗移植后能成活,苗木生长正常,获得的再生植株大田种植后能健壮生长,造林成活率95%以上,并能保持优树的优良遗传性状。 | ||
搜索关键词: | 一种 花序 组培快繁 方法 | ||
【主权项】:
一种大花序桉的组培快繁方法,其特征在于:采用大花序桉优良家系的优良单株,对其进行伐桩萌芽,利用萌芽作为外殖体,通过带芽茎段离体诱导无菌芽,经过对无菌芽的继代增殖培养、生根培养和生根苗移栽,获得再生植株;该方法的具体步骤如下:(1)在澳大利亚引种的家系试验林中,经测试对比,选择出适合本地生长的大花序桉优良家系;(2)在大花序桉优良家系中,通过测量胸径、树高、蓄积、连年生长量、木材材性以及干形指标,综合对比后选择出优良单株;(3)将优良单株在离地面15‑20cm高度处伐倒,促萌芽,当萌芽条长到12‑18cm时,剪取萌芽条,用水浸泡基部带回实验室备用;(4)萌芽条修剪去叶片、叶柄,用自来水流水冲洗3‑5min,再用饱和洗衣粉溶液洗涤10min,用纯净水清洗干净;(5)在超净工作台上,将萌芽条剪去嫩梢段和基部老化部分,留半木质化茎段,切成长2‑3cm,保留有1‑2个潜伏芽的切段做消毒材料;(6)将待消毒材料置于高压灭菌处理过的无菌瓶中,用75%酒精溶液浸泡15‑17s,无菌水清洗3‑5次,洗去残留酒精,再用0.1%HgCL2溶液浸泡并适当搅拌,7‑9min后倒去HgCL2溶液至专用收集罐中,用无菌水清洗材料5‑6次;(7)用镊子夹取清洗好的茎段,放置在灭菌的接种碟上,用灭菌过的滤纸吸干表面水分,切去叶柄和茎段的两端,接种到无菌芽诱导培养基上,全暗培养8‑12天后,在温度26±2℃,光照12h/d,光照强度1500‑2000lux条件下培养15‑25天; (8)外殖体萌芽后,侧芽和不定芽不断生长,萌芽15‑20天后,选取没有污染的无菌芽,切割后转入继代增殖培养基上,在温度26±2℃,光照强度2000‑2500lux条件下,培养18‑23天,以促进丛芽增殖和生长,在增殖培养基上反复继代培养,无菌芽苗数量不断增多;(9)当继代培养的芽苗长到2‑3cm,并有3‑4对叶片时,切取芽苗转入生根培养基上培养,温度28‑30℃,光照强度1200‑1500lux,培养6‑10天,当切口冒出短根或根点,出根率达到30‑40%时,移瓶至温度28‑35℃,光照强度3000‑5000lux的自然光下培养15‑20天;(10)生根齐全,苗高3‑4cm的生根瓶苗,洗去琼脂,移栽至用KMnO4消毒过的黄心土和蛭石做基质的营养杯或轻基质育苗杯上,黄心土和蛭石的比例为5:1,培养60‑80天,得到再生植株;(11)将具有发育不完全根,苗高1.5‑2.0cm的生根瓶苗,洗去琼脂,移栽到用KMnO4消毒过的黄心土+蛭石+河沙按照4:1:1做基质的营养杯,移栽前用ABT1生根粉100‑500ppm水溶液浸泡10‑30min,移栽后特殊培养25‑30天,将长出真根的苗和未长出真根的苗分开管理,再培养60‑80天后,得到再生植株;所述步骤(7)中的无菌芽诱导培养基为:改良MS+N6苄基腺嘌呤(6‑BA)1.0mg/L+萘乙酸0.2‑0.4mg/L+维生素C 2.0 mg/L+核黄素7.0 mg/L+蔗糖30g/L+琼脂3.75g/L,pH 5.8‑6.0;所述步骤(8)中的继代增殖 培养基为:改良MS+N6苄基腺嘌呤(6‑BA)0.3‑0.5mg/L+萘乙酸0.1‑0.15mg/L+核黄素7.0 mg/L+维生素C 2.0mg/L+蔗糖30g/L+琼脂3.75g/L,pH 5.8‑6.0;所述步骤(9)中的生根培养基为:1/2改良MS+ABT10.6mg/L+IBA0.1mg/L+蔗糖15g/L+琼脂3.9g/L,pH 5.8‑6.2。
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