[发明专利]人羊膜间充质干细胞分化为神经元样细胞的诱导方法无效

专利信息
申请号: 201210505245.0 申请日: 2012-11-30
公开(公告)号: CN103013917A 公开(公告)日: 2013-04-03
发明(设计)人: 陆华 申请(专利权)人: 陆华
主分类号: C12N5/0793 分类号: C12N5/0793;C12N5/0775
代理公司: 常州市维益专利事务所 32211 代理人: 何学成
地址: 214041 江苏*** 国省代码: 江苏;32
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摘要: 发明提供一种应用全反式维甲酸、碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)、表皮生长因子(EGF)诱导人羊膜间充质干细胞(hAMSCs)分化为神经元样细胞的方法,所述方法包括以下步骤:hAMSCs分离,hAMSCs原代培养,hAMSCs的传代培养与扩增,hAMSCs细胞免疫表型的检测,hAMSCs诱导分化为神经元样细胞以及细胞免疫荧光染色。本发明的诱导方法应用全反式维甲酸联合bFGF、EGF诱导脐带间充质干细胞分化为神经干细胞,不仅具有了神经细胞的典型形态,并表达神经元标志抗原神经元特异性烯醇化酶、星型胶质细胞标志抗原胶质纤维酸性蛋白,实现了间充质细胞跨胚层分化为非间充质细胞的能力,使其有可能成为今后临床应用更为理想的种子细胞。
搜索关键词: 羊膜 间充质 干细胞 化为 神经元 细胞 诱导 方法
【主权项】:
一种人羊膜间充质干细胞分化为神经元样细胞诱导方法,其特征在于,其应用全反式维甲酸联合bFGF、EGF诱导脐带间充质干细胞分化为神经干细胞,所述方法包括以下步骤:hAMSCs分离,hAMSCs原代培养,hAMSCs的传代培养与扩增,hAMSCs细胞免疫表型的检测,hAMSCs诱导分化为神经元样细胞以及细胞免疫荧光染色;其中,所述的hAMSCs分离的步骤包括:无菌条件下取产后弃置的新鲜胎盘,采用机械法将羊膜从胎盘组织上剥离,用D‑Hanks液冲洗,将漂洗后的羊膜用眼科剪剪成约1mm3碎块,加入2.5g/L胰蛋白酶37℃消化10分钟;加入含5%小牛血清的DMEM终止消化,轻柔吹打混匀后用200目细胞筛过滤;过滤后的羊膜组织中加入1.0g/L II型胶原酶消化液,37℃消化0.5小时;加入含5%小牛血清的DMEM终止消化,轻柔吹打混匀后200目细胞筛过滤,收集细胞;在1000转/分钟条件下离心5分钟;台盼兰染色计数活细胞,调整细胞密度为1×106/ml,接种至25cm2培养瓶,加入含10ng/ml bFGF和10%FBS的DMEM培养基;置37℃、饱和湿度、体积分数5%的CO2培养箱内培养,倒置相差显微镜下每日观察原代和传代细胞的生长情况和形态特征,隔天换液1次,并摄片记录;待细胞汇合度达80%后,用0.25%胰蛋白酶‑0.02%EDTA(乙二胺四乙酸)溶液于37℃消化2‑3分钟,加入培养基终止胰蛋白酶作用,1000转/分钟下离心5分钟,弃上清,细胞沉淀用培养基重新悬浮后,以1×107/ml的细胞密度传代;传代过程中,隔日换液1次,待细胞长满70%瓶底重复以上步骤;所述的hAMSCs的原代培养步骤包括:将羊膜细胞悬液移入离心管,配平,2000转/分钟进行15分钟离心,弃上清,收集细胞;将收集的细胞用0.01M PBS 30mL吹打成均匀悬液,1500转/分钟进行15分钟离心,洗涤2次,收集细胞;接种细胞前吸取FBS 3mL加入T75cm2型细胞培养瓶,置37℃,5%CO2,饱和湿度培养箱孵育30分钟,对培养瓶进行包被;弃包被液,用含20%FBS,4ng/ml表皮生长因子的DMEM/F12完全培养液重悬消化分离所得细胞,吹打均匀,计数细胞;调整细胞浓度为1.0×106细胞/ml,接种于包被后的T75cm2型细胞培养瓶中,置于37℃,5%CO2,饱和湿度的细胞培养箱中培养,相差显微镜动 态观察;培养4‑5天后全量换液,弃去未贴壁细胞,以后每3‑4天半量换液一次;观察细胞贴壁生长至80‑90%汇合时,以0.25%胰蛋白酶‑0.01%EDTA消化,所得细胞为原代细胞;所述的hAMSCs的传代培养与扩增步骤包括:观察原代hAMSCs细胞贴壁生长至80‑90%汇合时,吸弃培养瓶内原有培养液,吸取10ml0.01M PBS缓冲液轻轻加入培养瓶内洗涤,弃去洗液;加入0.25%胰蛋白酶‑0.01%EDTA消化液1.0ml,浸漫覆盖瓶底,倒置显微镜下观察;加入1.0ml FBS中止胰酶消化;加入10ml 0.01M PBS反复吹打冲洗,在室温下900转/分钟进行10分钟离心;弃去上清液,加入10ml DMEM/F12重悬细胞,按1∶2‑1∶3比例传代培养;置37℃,5%CO2,饱和湿度的细胞培养箱中培养,计为第1代(P1)hAMSCs,待细胞生长至80‑90%汇合时,重复上述操作进行P2、P3、P4…代细胞培养扩增;所述hAMSCs细胞免疫表型的检测步骤包括:取培养第2或第3代细胞,首先用0.25%的胰蛋白酶消化后,然后用含1%小牛血清白蛋白的PBS调整细胞浓度至1×107/ml;分别加入下列鼠抗人单克隆抗体:CD34‑FITC、CD45‑PE、CD19‑FITC、CD29‑FITC、CD44‑PE、CD105‑FITC、CD106‑FITC、HLA‑DR‑FITC,置4℃孵育半小时,PBS洗1次,进行流式细胞仪检测分析;所述的hAMSCs诱导分化为神经元样细胞的步骤包括:取2‑3代培养细胞,分别接种于6孔板,生长密度达到60%时,换成诱导培养基;37℃、5%CO2,饱和湿度静置培养;以及所述的细胞免疫荧光染色步骤包括:培养细胞在诱导分化3天后采用免疫荧光染色。
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