[发明专利]一种重组自交系群体高密度遗传图谱的构建方法在审
申请号: | 202110490790.6 | 申请日: | 2021-05-06 |
公开(公告)号: | CN113718342A | 公开(公告)日: | 2021-11-30 |
发明(设计)人: | 曾威;黎珉;石英尧;徐大伟;刘二宝;胡群文;包亚玲;许明慧;王宝琛;黄钰姮;王茜彧;黄世纪 | 申请(专利权)人: | 安徽农业大学 |
主分类号: | C40B50/06 | 分类号: | C40B50/06;C12Q1/6869;C12Q1/6858 |
代理公司: | 重庆以知共创专利代理事务所(普通合伙) 50226 | 代理人: | 高建华 |
地址: | 230000 *** | 国省代码: | 安徽;34 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 重组 自交系 群体 高密度 遗传 图谱 构建 方法 | ||
1.一种重组自交系群体高密度遗传图谱的构建方法,其特征在于,包括如下步骤:
SLAF文库构建和高通量测序:包括三个方面;第一,使用训练数据选择SLAF的预先设计方案;酶切设计必须根据标记效率特征来决定,包括整个基因组的随机分布、基因组的唯一性以及选定标记之间的一致扩增效率;在预先设计方案的基础上,进行大规模的生产性试验;第二,SLAF-seq文库构建;基因组DNA是由为个体设计的一组酶消化的;在两轮PCR反应中加入双条码,对每个个体进行区分,便于样本池的大小选择,保持个体间片段大小一致;第三,高通量测序和基因型鉴定;采用Illumina配对端测序协议对合并的RRLs进行深度测序,并通过软件进行基因型定义和验证;
序列数据分组和基因分型:将低质量的读码过滤掉,然后根据双条形码序列将原始读码分成每个子序列;从每个高质量的reads中剪切条形码和末端5-bp位置后,用SOAP软件将相同样本的clean reads定位到玉米基因组序列;将定位到相同位置的序列定义为一个SLAF locus;然后在亲本间检测每个SLAF位点的单核苷酸多态性(SNP)位点,首先过滤掉3个以上snp的SLAFs;然后根据亲代序列深度21.22倍的reads来定义每个SLAF位点的等位基因,对每个子代序列深度8.05倍的reads来定义等位基因;对于二倍体物种,一个SLAF基因座最多可以包含4个基因型,因此将等位基因超过4个的SLAF基因座定义为重复SLAFs,然后丢弃;只有具有2到4个等位基因的SLAFs被鉴定为多态性,并被认为是潜在的标记物;所有多态性SLAFs位点均按亲代和子代SNP位点的一致性进行基因分型;根据一种分离型(aa×bb)的RIL群体类型,分析了多态SLAFs的标记码;然后使用贝叶斯方法进行基因型评分,以进一步确保基因型的质量;
遗传连锁图谱构建:根据标记位点在B73_RefGen_V4基因组上的位置,将标记位点主要划分为连锁群(LGs);其次,计算标记间的修正优势对数(MLOD)分数,进一步验证标记对每个LGs的稳健性;MLOD评分0.05的标记在订购前进行过滤;为了保证高密度、高质量的遗传图谱的构建,采用新开发的HighMap策略对SLAF标记进行排序,纠正LGs内的基因分型错误;首先,利用两点分析法计算重组频率和LOD评分,用于推断连锁相;然后,结合增强吉布斯采样、空间采样和模拟退火算法,进行标记排序的迭代过程;在排序过程的第一阶段,使用空间抽样选择SLAF标记;按照测试交叉的优先顺序随机抽取一个标记,将重组频率小于给定采样半径的标记从标记集中排除;然后利用模拟退火算法寻找最佳映射顺序;退火系统继续进行,直到在一系列连续的步骤中,新生成的映射顺序被拒绝;采用阻塞吉布斯采样法,在得到最优的样本标记图谱顺序后,估计双亲的多点复合频率;利用更新后的重组频率对两个亲本映射进行积分,优化了下一个模拟退火周期的映射顺序;在3-4个循环之后,一旦获得稳定的图谱顺序,我们就转向下一轮图谱构建循环;选择当前未映射标记的子集,并将其添加到先前的样本中,以减小样本半径;映射算法不断重复,直到所有标记都被正确映射。
2.根据权利要求1所述的一种重组自交系群体高密度遗传图谱的构建方法,其特征在于,采用Illumina配对端测序协议对合并的RRLs进行深度测序的具体方法是,利用玉米B73_RefGen_V4参考基因组模拟不同酶产生的标记物的数量,设计了标记物发现实验;然后进行SLAF中间实验,按照预先设计好的方案进行SLAF文库构建;在264个RIL群体中,使用两种酶,其中两种酶分别为HaeIII和Hpy166II;在37℃条件下消化基因组DNA;随后用Klenow片段(3’→5’)(NEB)和dATP,将单个核苷酸(A)悬挑添加到已消化片段中;然后使用T4 DNA连接酶将双标记标记的测序适配器进行PAGE纯化;连接到a尾片段;采用稀释的限制性连接DNA样品、dNTP、高保真DNA聚合酶和PCR引物进行聚合酶链式反应(PCR);PCR产物随后使用AgencourtAMPure XP beads纯化并汇集;混合样品用2%琼脂糖凝胶电泳分离;使用QIAquick凝胶提取试剂盒(Qiagen,Hilden,Germany)对大小在414到464个碱基对带有索引和适配器的片段进行切除和纯化;凝胶纯化后的产品被稀释;在Illumina平台系统上进行配对测序。
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