[发明专利]一种单核苷酸多态性位点在辅助鉴定大豆花叶病毒抗性中的应用在审
申请号: | 201710605736.5 | 申请日: | 2017-07-24 |
公开(公告)号: | CN107227369A | 公开(公告)日: | 2017-10-03 |
发明(设计)人: | 张大勇;宁丽华;邵宏波;徐照龙;黄益洪;刘佳;戚维聪 | 申请(专利权)人: | 江苏省农业科学院 |
主分类号: | C12Q1/68 | 分类号: | C12Q1/68;C12N15/11 |
代理公司: | 江苏圣典律师事务所32237 | 代理人: | 杨文晰,孙忠浩 |
地址: | 210014 江*** | 国省代码: | 江苏;32 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 核苷酸 多态性 辅助 鉴定 大豆 花叶 病毒 抗性 中的 应用 | ||
技术领域
本发明涉及大豆抗病育种和分子生物学技术领域,具体涉及一种与大豆花叶病毒病相关SNP位点的应用及大豆花叶病毒抗性的检测方法。
背景技术
大豆花叶病毒(Soybean Mosaic Virus,SMV)是一种世界性大豆病害,对大豆生产影响最大的病毒之一,严重影响大豆的产量和品质。 南京农业大学将我国的SMV株系划分为SC1-SC21, 其中SC3和SC7是黄淮和长江流域大豆产区最流行的株系。大豆花叶病毒分布广、危害大,化学药剂难以防治,培育和筛选抗病品种是解决大豆病毒性的最有效经济途径。
单核苷酸多态性(single nucleotide polymorphism,SNP),是指在基因组水平上由单个核苷酸的变异所引起的DNA序列多态性,SNP所表现的多态性只涉及到单个碱基的变异,这种变异可由单个碱基的转换(transition)或颠换(transversion)所引起,也可由碱基的插入或缺失所致,但通常所说的SNP并不包括后两种情况。
大豆基因组虽然早在2010年已经完成测序,但各个基因的功能并没有完全阐明。如果能从中找出与大豆花叶病毒抗性相关的位点,并利用该位点开发分子标记,利用分子标记辅助育种,将能大大提高育种效率。近年,单核苷酸多态性(SNP)越来越受到科研人员的重视,同时也发现许多SNP与作物的重要农艺性状和抗性具有一定的关联性, 程浩(2008)博士毕业论文(大豆异黄酮合酶,黄烷酮3-羟化酶基因SNPs与种子异黄酮含量及抗逆性的关联分析)报道称大豆IFS1, IFS2和F3H基因中都存在与大豆对花叶病毒抗性显著相关的SNPs。 如IFS1基因中与大豆对SMV Sc-3与 SMV Sc-7抗性显著相关的SNPs分别为14和2个; 在IFS2基因中发现与大豆对SMV Sc-3与 SMV Sc-7抗性显著相关的为Indel(1 bp)。在F3H基因中发现与大豆对SMV Sc-3 和Sc-7抗性显著相关的SNPs为7个和1个。因此,发掘和利用大豆中重要的SNP位点具有重要的现实和理论意义。
发明内容
本发明的目的是提供一种Glyma.07G250300中与大豆花叶病毒病相关SNP位点发掘及应用,本发明的目的可以通过以下技术实现:
一种单核苷酸多态性位点在辅助鉴定大豆花叶病毒抗性中的应用,该点位于大豆基因组Glyma.07G250300基因编码区开放阅读框第557位。
进一步,上述单核苷酸多态性位点的应用是指:对大豆基因组Glyma.07G250300基因编码区开放阅读框第557位核苷酸进行基因型鉴定,若第557位核苷酸残基为“A”,则认为大豆材料抗花叶病毒;若第557位核苷酸残基为“G”,则认为大豆材料对花叶病毒敏感。
进一步,上述单核苷酸多态性位点的应用,其具体步骤如下:
1)根据大豆基因组Glyma.07G250300基因编码区内开放阅读框(ORF) 设计上游引物和下游引物,并以大豆基因组DNA为模板,进行PCR扩增;
2)对PCR扩增产物进行测序,若Glyma.07G250300基因编码区内开放阅读框第557位核苷酸为“A”,则认为大豆材料抗花叶病毒;若第557位核苷酸为“G”,则认为该大豆材料对花叶病毒敏感。
进一步,上述单核苷酸多态性位点的应用中,所述上游引物位于开放阅读框
(5‵→3‵)第71位核苷酸残基开始,第90位核苷酸残基结束;下游引物从开放读框第635位核苷酸残基开始,第657位核苷酸残基结束。
进一步,所述上游引物和下游引物核苷酸序列分别如SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2所示;
PCR扩增体系:2×Phanta Max Buffer 25μL;dNTP Mix(10mM each)1μL;上游引物4μL(10μM);下游引物4μL(10μM);Phanta Max Super-Fidelity DNA Polymerase(1 U/μL);模板DNA 4μL(20ng/μL);ddH2O补足到50μL;
PCR 扩增程序:95℃预变性3 min;然后95℃变性15 s,56℃退火45 s,72℃延伸30 s,35个循环;最后72℃延伸10 min,4℃保温;
PCR反应结束后,将所得PCR产物(786bp)进行1%琼脂糖凝胶电泳,然后测序。
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