[发明专利]一种酶法制备稀有人参皂苷Rh1的方法在审

专利信息
申请号: 201610219039.1 申请日: 2016-04-08
公开(公告)号: CN105695552A 公开(公告)日: 2016-06-22
发明(设计)人: 赵林果;赵东霞;解静聪;裴建军;李琦;房仙颖 申请(专利权)人: 南京林业大学
主分类号: C12P33/20 分类号: C12P33/20;C12N9/42;C12N9/24;C12N15/70;C12N15/66
代理公司: 南京经纬专利商标代理有限公司 32200 代理人: 唐循文
地址: 210037 江*** 国省代码: 江苏;32
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摘要:
搜索关键词: 一种 法制 稀有 人参 皂苷 rh1 方法
【说明书】:

技术领域

发明属于生物医药领域,涉及稀有人参皂苷Rh1的制备方法,尤其涉及利用重组表达 的来源于α-鼠李糖苷酶和β-葡萄糖苷酶转化人参皂苷Re生成Rh1。

背景技术

人参(Panaxginseng)是亚洲传统的名贵中药材,人参皂苷是其主要的生物活性物质, 具有生物活性显著、药理作用独特等特点。随着分析技术水平的提高,人参皂苷的化学成分 得到了进一步的明确,现已经分离鉴定出180余种人参皂苷单体,其中5种主要皂苷(人参皂 苷Rb1、Rb2、Rc、Re和Rg1)占总皂苷的80%以上,而人参皂苷(Rg3、Rh2、CompoundK、 Rg2、F1和Rh1)含量很低,称为稀有皂苷(AppliedMicrobiologyandBiotechnology,2012, 94:673-682),但其药理活性优于上述高含量的人参皂苷。

稀有皂苷Rh1具有启动和增强免疫应答,促进肝细胞增殖、杀伤肿瘤细胞,以及抗老化 等生理作用,可用于调节机体免疫功能,治疗和预防肝炎等。但稀有皂苷Rh1在植物中含量 很低,直接提取工艺复杂,成本太高。而人参皂苷Re在人参总皂苷中含量较高,与稀有人参 皂苷Rh1具有相似的化学结构,因此,可以通过对人参皂苷Re进行转化得到Rh1(图1),但需 要特异性的降解C20位上的鼠李糖基和C6位上的葡萄糖基。

利用化学法和生物转化法可以将人参皂苷Re转化为Rh1。但化学转化法因其反应剧烈、 选择性差、副产物多等缺点而不被采用。生物转化具有反应条件温和,特异性好等特点而受 到青睐。目前人参皂苷的生物转化法主要有微生物转化法和酶转化法。微生物转化法因其转 化体系复杂,容易产生副产物,对产品的纯度有一定影响。如,董阿玲等发现黑曲霉和蓝色 犁头霉能转化人参皂苷Rg1生产人参皂苷Rh1,但存在转化周期较长,且有其它皂苷副产物 等缺点(中国药物,2001,10(3):115-118)。酶法转化能避免微生物转化法的缺陷,但各 种酶对底物的专一性不同,降解的糖苷键类型也各不相同,因此,寻找能高效、特异性降解 人参皂苷Re生产人参皂苷Rh1的糖苷水解酶成为了研究关键。目前,还没有利用酶转化人 参皂苷Re生产人参皂苷Rh1的报道。

发明内容

解决的技术问题:本发明提供了一种酶法制备稀有人参皂苷Rh1的方法,该方法所使用 的重组酶分别来源于Thermotogapetrophila的β-葡萄糖苷酶和黑曲霉(Aspergillusniger)的α- 鼠李糖苷酶。

技术方案:一种酶法制备稀有人参皂苷Rh1的方法,利用来源于Thermotogapetrophila 的β-葡萄糖苷酶和黑曲霉(Aspergillusniger)的α-鼠李糖苷酶,降解人参皂苷Re生产Rh1。

所述β-葡萄糖苷酶的核苷酸序列如SEQIDNO:1所示,氨基酸序列如SEQIDNO:2所示。

所述α-鼠李糖苷酶的核苷酸序列如SEQIDNO:3所示,氨基酸序列如SEQIDNO:4所示。

所述β-葡萄糖苷酶是通过重组表达制备的,步骤为:

(1)以提取的Thermotogapetrophila基因组DNA为模板,用具有SEQIDNO:5所示的 核苷酸序列为上游引物和具有SEQIDNO:6所示的核苷酸序列为下游引物,PCR扩增得到β- 葡萄糖苷酶的DNA分子;

(2)将上述β-葡萄糖苷酶的DNA分子和pET-20b分别用NdeI和XhoI进行双酶切, 连接并转化得到含有β-葡萄糖苷酶的DNA分子的重组质粒;

(3)将上述获得的重组质粒转化表达宿主E.coliBL21(DE3),IPTG诱导β-葡萄糖苷酶 表达,收集菌体,破碎细胞,80℃热处理40分钟,获得纯化的β-葡萄糖苷酶。

所述α-鼠李糖苷酶是通过重组表达制备的,步骤为:

(1)以提取的黑曲霉(Aspergillusniger)NL-1cDNA为模板,用具有SEQIDNO:7所 示的核苷酸序列为上游引物和具有SEQIDNO:8所示的核苷酸序列为下游引物,PCR扩增得 到α-鼠李糖苷酶的DNA分子;

(2)将上述β-葡萄糖苷酶的DNA分子和pET-20b分别用NdeI和XhoI进行双酶切, 连接并转化得到含有α-鼠李糖苷酶的DNA分子的重组质粒;

(3)将上述获得的重组质粒转化表达宿主E.coliBL21(DE3),诱导α-鼠李糖苷酶表达, 收集菌体,破碎细胞,离心获α-鼠李糖苷酶。

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