[发明专利]一种T-发卡结构介导的测定DNA侧翼未知序列的方法无效
| 申请号: | 201310666359.8 | 申请日: | 2013-12-10 |
| 公开(公告)号: | CN103627808A | 公开(公告)日: | 2014-03-12 |
| 发明(设计)人: | 邬敏辰;汪俊卿;胡蝶;朱利娟;李剑芳 | 申请(专利权)人: | 江南大学 |
| 主分类号: | C12Q1/68 | 分类号: | C12Q1/68 |
| 代理公司: | 暂无信息 | 代理人: | 暂无信息 |
| 地址: | 214122 江*** | 国省代码: | 江苏;32 |
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| 摘要: | |||
| 搜索关键词: | 一种 发卡 结构 测定 dna 侧翼 未知 序列 方法 | ||
1.一种T-发卡结构介导的测定DNA侧翼未知序列的方法,其特征在于:合成一条极易形成发卡结构的寡聚核苷酸序列(HSO-T),经变性、退火可形成稳定的HSO-T接头;基于发卡结构序列,合成特异性引物THSO-F,再根据已知的DNA序列,合成两条特异性下游引物和两条上游引物;选择单一限制性内切酶酶切基因组DNA,根据酶切产物末端的类型,选择rTaq或Ex Taq进行修饰,修饰后其3′端均被添加上碱基“A”;将HSO-T接头与经Taq处理的酶切产物进行连接;以连接物为模板,采用THSO-F和两条下游引物进行巢式PCR扩增,获得已知DNA序列5′端侧翼未知序列;同理,采用THSO-F和两条上游引物进行巢式PCR扩增,获得3′端侧翼未知序列:
(1)T-发卡结构及PCR引物的合成:根据原核生物回文结构的原理,合成一条极易形成发卡结构的、3′端含有“T”的寡聚核苷酸序列,命名为HSO-T(42bp);基于HSO-T序列,合成一条特异性PCR引物,命名为THSO-F(20bp);
HSO-T:5′-GACTACTGGCATGGGCGGATTACTCGCCCATGCCAGTAGTCT-3′
THSO-F:5′-ACTCGCCCATGCCAGTAGTC-3′
(2)上下游引物的合成:基于已知的DNA序列,合成两条扩增已知DNA序列5′端侧翼未知序列的特异性下游引物,命名为Pri-R1和Pri-R2,Pri-R2距离已知DNA序列5′端30bp以上;同理,基于已知的DNA序列,合成两条扩增3′端侧翼未知序列的上游引物,命名为Pri-F1和Pri-F2,Pri-F2距离3′端30bp以上;
(3)限制性内切酶的选择:分析已知DNA序列中限制性内切酶的酶切位点,选择在已知DNA序列中没有酶切位点的限制性内切酶;本发明可供选择的、产生5′粘性末端的内切酶有EcoR I、HindIII、Bgl II、Sal I、BamH I、Nco I、Xba I、Xho I、Cla I、Msp I和Nde I等,产生平末端的酶有EcoR V、Sna B和Sca I等,产生3′粘性末端的酶有Aat II、Bmt I、Pst I、Sac I和Sph I等;
(4)基因组DNA的酶切:采用步骤(3)选择的单一限制性内切酶对基因组DNA进行完全酶切,纯化酶切产物;
(5)酶切产物的修饰:基因组DNA经限制性内切酶酶切后,其酶切产物两端有3种形式,分别为5′粘性末端、3′粘性末端和平末端;针对5′粘性末端,利用rTaq或Ex Taq DNA聚合酶具有不依赖于模板的5′→3′核苷酸聚合活性,将粘性末端补齐,并在3′端添加上碱基“A”;针对平末端,直接利用该两种酶在3′端添加上碱基“A”;针对3′粘性末端,利用Ex Taq DNA聚合酶具有3′→5′核苷酸外切活性,将粘性末端切齐,再利用该酶均具有不依赖于模板的5′→3′核苷酸聚合活性,在3′端添加上碱基“A”;
(6)HSO-T接头与酶切修饰产物的连接:HSO-T经变性、退火形成HSO-T接头,将其与经Taq处理的基因组酶切片段进行连接,即可作为PCR扩增的模板;
(7)目的DNA片段的PCR扩增:以步骤(6)的连接物为模板,THSO-F和Pri-R1作为上下游引物进行第一轮PCR扩增;再以该轮PCR产物为模板,THSO-F和Pri-R2为引物进行第二轮PCR扩增;将两轮PCR(巢式PCR)产物进行琼脂糖凝胶电泳分析;根据巢式PCR原理验证扩增产物是否为目的DNA片段,从而获得已知DNA序列5′端侧翼未知序列;
同理,以步骤(6)的连接物为模板,Pri-F1和THSO-F作为上下游引物进行第一轮PCR扩增;再以该轮PCR产物为模板,Pri-F2和THSO-F为引物进行第二轮PCR扩增;将两轮PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳分析,从而获得已知DNA序列3′端侧翼未知序列。
2.根据权利要求1所述的方法,操作过程中所使用的反应体系和条件如下:
(1)HSO-T接头的构建:HSO-T(100μmol/L)2μL,ddH2O8μL,混匀;使用PCR基因扩增仪94℃变性3min,缓慢降温(1℃/s)至25℃后,恒温退火30min;
(2)基因组DNA的酶切:酶切反应体系和条件为:10×Buffer1μL,限制性内切酶0.5μL,基因组DNA5μL,ddH2O2.5μL;30或37℃反应4h;其中10×Buffer的类型和酶切温度需与所选内切酶相匹配;
(3)酶切产物的修饰:酶切产物20μL,10×PCR Buffer2.5μL,dNTP0.5μL,rTaq或Ex Taq0.25μL,ddH2O1.75μL;使用PCR基因扩增仪72℃反应10min;
(4)酶切修饰产物与HSO-T接头的连接:酶切修饰产物5μL,HSO-T接头3μL,10×Ligase buffer1μL,T4DNA Ligase1μL;16℃反应4h或过夜,即可作为PCR扩增的模板;
(5)已知DNA序列5′端侧翼未知序列的PCR扩增:10×PCR Buffer2.5μL,dNTP1.5μL,连接物2μL,THSO-F0.5μL,Pri-R10.5μL,ddH2O17.75μL,rTaq酶0.25μL;第一轮PCR扩增产物命名为5′-1st-Out;10×PCR Buffer2.5μL,dNTP1.5μL,5′-1st-Out2μL,THSO-F0.5μL,Pri-R2 0.5μL,ddH2O17.75μL,rTaq酶0.25μL,第二轮PCR扩增产物命名为5′-2nd-In;
(6)已知DNA序列3′端侧翼未知序列的PCR扩增:10×PCR Buffer2.5μL,dNTP1.5μL,连接物2μL,THSO-F0.5μL,Pri-F10.5μL,ddH2O17.75μL,rTaq酶0.25μL;第一轮PCR扩增产物命名为3′-1st-Out;10×PCR Buffer2.5μL,dNTP1.5μL,3′-1st-Out2μL,THSO-F0.5μL,Pri-F20.5μL,ddH2O17.75μL,rTaq酶0.25μL,第二轮PCR扩增产物命名为3′-2nd-In。
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