[发明专利]一种基于CRISPR基因敲除技术建立脆性X综合症灵长类动物模型的方法无效
申请号: | 201310607776.5 | 申请日: | 2013-11-26 |
公开(公告)号: | CN103642836A | 公开(公告)日: | 2014-03-19 |
发明(设计)人: | 薛志刚;范国平;林卿 | 申请(专利权)人: | 苏州同善生物科技有限公司 |
主分类号: | C12N15/85 | 分类号: | C12N15/85;A01K67/027 |
代理公司: | 北京科亿知识产权代理事务所(普通合伙) 11350 | 代理人: | 汤东凤 |
地址: | 215000 江苏省苏州市吴中经*** | 国省代码: | 江苏;32 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 基于 crispr 基因 技术 建立 脆性 综合症 灵长类 动物 模型 方法 | ||
技术领域
本发明涉及生物医学领域,具体为一种基于CRISPR基因敲除技术建立脆性X综合症灵长类动物模型的方法。
背景技术
脆性X染色体综合症(Fragile X syndrome, FXS)是X染色体连锁的一种最常见遗传性弱智,该病影响着约1/3600的男性和1/4000-6000的女性。病因是FMR1基因发生CGG高拷贝动态突变,导致FMR1基因甲基化(DNA methylation)和基因沉默 (gene silencing),智力迟钝蛋白(FMRP)不表达或表达量降低导致。
有关FXS发病机理的知识主要来自对FMR1基因敲除小鼠模型的研究。FXS小鼠模型表现出部分与人类患者相似的临床症状,如:颤抖、运动共济失调、注意力缺陷、智力障碍。在分子水平,由于FMRP表达量减少或缺失,FXS神经元突触传递的相关蛋白表达量上调;在细胞水平,神经元突触的可塑性和发育受到影响,突触数量减少,树突变长、变细,树突基部的突起减少;促代谢型谷氨酸受体(metabotropic glutamate receptor, mGluR)信号相关的长时程抑制(long-term depression, LTD)受到抑制。小鼠动物模型的建立使得对FXS的研究具有可操作性、重复性和可比性,有助于认识该疾病的发生机制。但是由于种系之间的差异,FXS小鼠动物模型的研究不能完全代替高等动物模型的研究,特别是在神经药理和毒性测试方面。因此建立灵长类FXS疾病模型,研究神经发育动态过程中出现的疾病表型变化,对阐明FXS发病机制非常必要。
人类疾病的动物模型是疾病机理研究和新药研发的重要基础。长期以来,生物医学基础研究主要依赖于啮齿类动物模型。但由于啮齿类动物与人类之间存在巨大的种属差异,使得基础研究成果不能有效地转化为临床应用。灵长类动物作为人类的近亲,其组织结构、免疫、生理、代谢和生殖等方面与人类高度相似,利用其创建的人类疾病模型,能比其他模式动物更好地复制人类传染性和非传染性疾病模型,并有效地模拟人类疾病的病理过程,可作为研究人类疾病的最佳模式生物。同时,灵长类动物研究成果能直接转化为临床应用,能更有效地预测新疫苗、新药和新诊断试剂等在临床应用中的效果,大大降低新药研发的风险。
基因定点修饰是研究基因功能的重要手段之一,也可被用于人类遗传性疾病的治疗,因此这类技术成为现代分子生物学的研究热点。Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats (CRISPR)/CRISPR-associated (Cas)9系统成功被改造为第三代人工核酸内切酶,与锌指核酸内切酶(zinc finger nucleases, ZFNs)和类转录激活因子效应物核酸酶(transcription activator-like effector nucleases, TALENs)一样可用于各种复杂基因组的编辑。目前该技术成功应用于人类细胞、斑马鱼和小鼠以及细菌的基因组精确修饰,修饰类型包括基因定点InDel突变、基因定点敲入、两位点同时突变和小片段的缺失。由于其突变效率高制作简单及成本低的特点,被认为是一种具有广阔应用前景的基因组定点改造分子工具。
在对FXS疾病的研究中,迄今国内外尚无灵长类动物模型的报道。
发明内容
本发明针对现有FXS疾病小鼠动物模型的不足,公开了一种用CRISPR基因敲除技术建立FXS灵长类动物模型的方法,以期阐明FXS的发病机制。
为实现上述目的,本发明提供如下技术方案:
一种基于CRISPR基因敲除技术建立脆性X综合症灵长类动物模型的方法,包括以下步骤:
(1) 建立FMR1基因敲除食蟹猴模型;
(2) 食蟹猴动物模型的鉴定及相关功能分析;
(3) 食蟹猴动物模型的神经特征和学习记忆能力测试。
所述建立FMR1基因敲除食蟹猴模型,具体包括以下步骤:
1)CRISPR靶向修饰基因载体的构建;
2)食蟹猴促排卵和体外受精;
3)食蟹猴受精卵的显微注射;
4)受精卵体外培养、植入受体及靶向基因修饰动物的培育。
所述食蟹猴动物模型的鉴定及相关功能分析,具体包括以下步骤:
1)对CRISPR靶向位点进行DNA测序鉴定食蟹猴动物模型的基因型;
2)利用实时定量PCR(real-time PCR)检测食蟹猴细胞中FMR1基因mRNA水平的降低;
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