[发明专利]一种大肠杆菌-棒状杆菌穿梭型诱导表达载体pDXW-8及其构建方法有效

专利信息
申请号: 200910233618.1 申请日: 2009-10-26
公开(公告)号: CN101693901A 公开(公告)日: 2010-04-14
发明(设计)人: 王小元;徐大庆;李烨;谭延振 申请(专利权)人: 江南大学
主分类号: C12N15/77 分类号: C12N15/77;C12R1/15
代理公司: 无锡市大为专利商标事务所 32104 代理人: 时旭丹;刘品超
地址: 214122 江苏省无锡市蠡湖大道*** 国省代码: 江苏;32
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摘要:
搜索关键词: 一种 大肠杆菌 杆菌 穿梭 诱导 表达 载体 pdxw 及其 构建 方法
【权利要求书】:

1.一种大肠杆菌-棒状杆菌穿梭型诱导表达载体pDXW-8,其核苷酸序列为:SEQ ID NO:1。

2.根据权利要求1所述的表达载体pDXW-8,其特征在于:

含有用于严谨控制tac启动子表达的负调控基因lacIPF104,从6985到5903位,其携带的外源启动子PF104及SD序列,PF104及SD序列核苷酸序列为cagcgtattt gaccgatccg gacacctggg ataatgtgtg gattttgtcg gtg gtgaat,其中划线部分为启动子PF104序列,加框部分为SD序列;

含有用于克隆外源基因的人工合成的74bp多克隆位点MCS,从9546位到9472位,包含如下11个单一的限制性内切酶切点EcoRI,NheI,SacI,NcoI,NotI,XhoI,KpnI,BglII,SacII,AflII,和HindIII,其核苷酸序列为gaattcgctagcgagctccc atgggcggcc gcctcgaggg taccagatct ccgcggctta agctgcagaa gctt。

3.如权利要求1或2所述的表达载体pDXW-8的构建方法,其特征是:

以质粒pET-28a为模板,kan-F和kan-R为引物,通过PCR扩增1023bp的kan基因,在扩增产物的5′和3′末端引入限制酶SgrAI酶切位点,PCR产物用SgrAI酶切;pKK223-3同样用SgrAI酶切,用碱性磷酸酶CIAP去磷酸化;两者连接,由此产生的质粒大小为5617bp,命名为pDXW-5;

以质粒pC2为模板,rep-F和rep-R为引物,通过PCR扩增2686bp的rep片段,在扩增产物的5′和3′末端引入限制酶PshAI酶切位点,PCR产物用PshAI酶切,并连接到同样用PshAI酶切,且用CIAP去磷酸化后的pDXW-5,由此产生的质粒大小为8313bp,命名为pDXW-6;为了证明rep片段和kan基因在棒状杆菌中的功能,我们用质粒pDXW-6转化黄色短杆菌B.flavum,并选择卡那霉素抗性克隆;

以质粒pET-28a为模板,携带PF104序列的正向引物lacI-F,和反向引物lacI-R为引物,通过PCR扩增1191bp的lacIPF104基因,在扩增产物的5′和3′末端引入限制酶EcoRI和HindIII酶切位点,PCR产物用EcoRI和HindIII双切,并连接到同样用EcoRI和HindIII双切后的pDXW-6,由此产生的质粒大小为9510bp,命名为pDXW-7;

人工合成的74bp多克隆位点MCS的DNA片段5′gaattcgcta gcgagctcccatgggcggcc gcctcgaggg taccagatct ccgcggctta agctgcagaa gctt 3’,它包含有11个单一的限制性内切酶切点:EcoRI,NheI,SacI,NcoI,NotI,XhoI,KpnI,BglII,SacII,AflII,和HindIII;用EcoRI和HindIII双切74bp的多克隆位点MCS片段,并连接到同样用EcoRI和HindIII双切的pDXW-7上,取代pDXW-7原有的多克隆位点,对该构建质粒的MCS及其两翼进行测序,以验证MCS正确连接到pDXW-7上,构建的质粒大小为9548bp,并命名为pDXW-8;

以质粒pDXW-8为模板,分别用引物对kan/rep-D/kan-F,kan/rep-D/kan-R,kan/rep-D/rep-F,kan/rep-D/rep-R,lacI-D/lacI-F,及lacI-D/lacI-R进行DNA片段的PCR扩增,鉴定了质粒pDXW-8上kan基因插入方向为正向插入,rep和lacIPF104片段的插入方向均为反向插入;

以上所述的PCR扩增所需引物序列:

kan-F:agcacaccgg cgctttgatc ttttctacgg ggtc

kan-R:agcacaccgg cgtcaggtgg cacttttcgg ggaa

rep-F:agtagactat cgtccattgt caacaacaag acccatca

rep-R:agtagactat cgtcgtctac gtctgatgct ttgaatcg

lacI-F:gctgtatacc agcgtatttg accgatccgg acacctggga taatgtgtgg attttgtcgggaaaggatgg tgaatatgaa accagtaacg

lacI-R:gtatacggtg cctaatgagt gagctaactt

Kan/rep-D:ctcacaattc cacacattat acga

lacI-D:acacggaggc atcaagtgac caaa

PCR反应条件:

扩增kan基因PCR反应:所用引物为kan-F,kan-R;退火温度57℃,延伸时间75s;

扩增rep片段PCR反应:所用引物为rep-F,rep-R,退火温度61℃,延伸时间165s;

扩增lacIPF104基因PCR反应:所用引物为lacI-F,lacI-R,退火温度59℃,延伸时间75s;

确定kan基因正向插入PCR反应:所用引物为Kan/rep-D,Kan-R,退火温度57℃,延伸时间75s;

确定kan基因反向插入PCR反应:所用引物为Kan/rep-D,Kan-F,退火温度57℃,延伸时间75s;

确定rep片段正向插入PCR反应:所用引物为Kan/rep-D,rep-R,退火温度57℃,延伸时间255s;

确定rep片段反向插入PCR反应:所用引物为Kan/rep-D,rep-F,退火温度57℃,延伸时间255s;

确定lacIPF104基因正向插入PCR反应:所用引物为lacI-D,lacI-R,退火温度59℃,延伸时间105s;

确定lacIPF104基因反向插入PCR反应:所用引物为lacI-D,lacI-F,退火温度59℃,延伸时间105s。

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