[发明专利]赭曲霉毒素A的高密度分子模拟表位肽的制备方法及应用无效
| 申请号: | 200910115449.1 | 申请日: | 2009-05-31 |
| 公开(公告)号: | CN101633932A | 公开(公告)日: | 2010-01-27 |
| 发明(设计)人: | 刘仁荣;刘华 | 申请(专利权)人: | 江西科技师范学院 |
| 主分类号: | C12N15/70 | 分类号: | C12N15/70;C12P21/02;G01N33/543;G01N33/558;C12R1/19 |
| 代理公司: | 南昌新天下专利代理有限公司 | 代理人: | 施秀瑾 |
| 地址: | 330013江西省南昌*** | 国省代码: | 江西;36 |
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| 摘要: | |||
| 搜索关键词: | 曲霉 毒素 高密度 分子 模拟 表位肽 制备 方法 应用 | ||
1.赭曲霉毒素A高密度模拟表位肽作为固相竞争抗原在赭曲霉毒素A酶联免疫检 测分析中的应用,具体步骤在于:
(1)取纯化的高密度模拟表位蛋白,紫外分光光度计测定其在280nm的吸光值 A280nm,根据Warburg-christian公式:蛋白质浓度mg/ml=1.55A280nm-0.76A260nm, 确定其蛋白浓度;
(2)采用方阵滴定确定高密度模拟表位蛋白和抗赭曲霉毒素A抗体的最佳使用浓 度;具体如下:
A、用pH7.2PBS磷酸缓冲溶液将高密度模拟表位蛋白配制成40、20、10、5、2.5、 1.25和0.625μg/ml的浓度,按每条酶标板一个浓度,每孔100μL加入酶标板中,4 ℃过夜;
B、倾去包被液,PBST洗涤三次,每次在厚叠吸水纸上扣干,每孔加入300μL 3% 的以PBST为溶剂的脱脂牛奶作为封阻液,37℃保温保湿1小时;倾去封阻液,PBST洗 涤三次,每次在厚叠吸水纸上扣干;PBST为PBS加0.2%的吐温20;
C、将抗赭曲霉毒素A抗体用PBS倍比稀释成1∶1000、1∶2000、1∶4000、1∶ 8000、1∶16000、1∶32000和1∶64000的浓度,依次加入各条处理好的酶标板板孔 中,最后一孔加入PBS作空白对照,37℃保温保湿1小时;
D、PBST洗板三次,每次在厚叠吸水纸上扣干;每孔加100μL辣根过氧化物酶标 记的抗抗体即酶标二抗,37℃,保温保湿1小时;
E、PBST洗板三次,每次在厚叠吸水纸上扣干;每孔加OPD或TMB底物液100μL, 37℃保温保湿避光反应10分钟后,每孔加入50μL 2M H2SO4终止反应,以空白对照 孔调零,在酶标仪上测定酶标板492nm或450nm的吸光值,根据所有孔吸光值进行比 较,选择吸光值在1.5左右最低的高密度模拟表位蛋白包被浓度和最大的抗体稀释度 即为高密度模拟表位蛋白和抗赭曲霉毒素A抗体的最佳使用浓度;
(3)通过化学合成模拟表位多肽IRPMDVP,制作标准曲线确定合成模拟表位多肽 IRPMDVP与赭曲霉毒素A标准品的剂量关系,以之替代赭曲霉毒素A标准品,具体实 施如下:
A、根据方阵滴定确定的赭曲霉毒素A高密度模拟表位蛋白的浓度;高密度模拟表 位蛋白溶于0.1M pH8.6的NaHCO3,100μL/孔,4℃包被过夜;
B、PBST洗板四次,3%脱脂牛奶300μL/孔4℃封闭2h;
C、PBST洗板四次,各孔分别加入不同浓度的赭曲霉毒素A标准品、合成模拟表 位多肽50μL,再全部加入方阵滴定确定的抗赭曲霉毒素A抗体50μL,振荡混匀,37 ℃保温保湿1h;
D、PBST洗涤6次,加入辣根过氧化物酶标记的抗抗体,量为100μL/孔,37℃ 作用1h;
E、洗涤6次;联苯二胺OPD显色,2M H2SO4终止反应,测定492nm波长光密度OD 值,计算各浓度的结合率,结合率%=B/B0×100%;B0为不加赭曲霉毒素A或不加合成 多肽的OD值,B为加赭曲霉毒素A或加入合成多肽的OD值;
F、根据赭曲霉毒素A的浓度和结合率绘制赭曲霉毒素A竞争抑制曲线,根据合成 模拟表位多肽的浓度和结合率绘制多肽竞争抑制曲线,通过参照标准曲线中相同结合 率可得出标准品赭曲霉毒素A与合成模拟表位多肽的剂量关系;
(4)高密度模拟表位蛋白作为竞争抗原替代赭曲霉毒素A人工抗原,合成模拟表 位多肽替代赭曲霉毒素A标准品用于ELISA检测,具体步骤如下:
A、根据方阵滴定确定的最佳高密度模拟表位蛋白浓度,用pH7.2PBS磷酸缓冲溶 液稀释,在酶标板中每孔加100μL高密度模拟表位蛋白,4℃过夜;
B、倾去包被液,PBST洗涤三次,每次在厚叠吸水纸上扣干,每孔加入300μL 3% 溶于PBST的脱脂牛奶作为封阻液,37℃保温保湿1小时;倾去封阻液,PBST洗涤三次, 每次在厚叠吸水纸上扣干;其中PBST为PBS加0.2%的吐温20;
C、在酶标板各孔中加入浓度为40000,20000,10000,5000,2500,1250,625, 312.5,156,100,50和0pg/mL的合成模拟表位多肽或溶于35%甲醇PBS的待测样品 50μL,再全部加入以PBS稀释的抗赭曲霉毒素A抗体50μL,同时以PBST代替抗体 设置空白对照,37℃,保温保湿1小时;
D、PBST洗板三次,每次在厚叠吸水纸上扣干,每孔加100μL辣根过氧化物酶标 记的抗抗体,37℃,保温保湿1小时;
E、PBST洗板三次,每次在厚叠吸水纸上扣干;每孔加OPD或TMB底物液100μL, 37℃保温保湿避光反应10分钟后,每孔加入50μL 2M H2SO4终止反应,以空白对照 孔调零,在酶标仪上测定酶标板492nm或450nm的吸光值,计算各浓度的结合率,结 合率%=B/B0×100%,B0为合成模拟表位多肽浓度为0时的吸光值,B为合成模拟表位 多肽各浓度的吸光值,同样计算各待测样品孔的结合率;B为待测样品孔的吸光值, 以各合成模拟表位多肽浓度的常用对数值1gC为横坐标,各浓度合成模拟表位多肽相 应的结合率为纵坐标制作竞争抑制曲线;
F、以各待测样品孔的结合率对应的纵坐标,查标准曲线对应的横坐标,再通过步 骤(3)确定的合成模拟表位多肽与赭曲霉毒素A标准品的剂量关系的标准曲线,即可 得出样品中赭曲霉毒素A的含量,或可用酶联免疫吸附检测方法专用分析软件对数据 进行分析得出结果;
其中赭曲霉毒素A高密度模拟表位肽依照下列步骤制备:
(1)模拟表位表达载体的构建及鉴定
根据赭曲霉毒素A的序列,用化学方法合成二条包含赭曲霉毒素A模拟表位及核 酸内切酶位点的核苷酸序列,以其中一模拟表位肽为例,
合成T1:5′-GAATTCATTCGTCCTATGGTGGATCCG-3′
和T2:5′-GGATCCCGGATCCACCATAGGACGAAT-3′,加dd H2O分别配成20pmol/ μl的寡聚核苷酸单链溶液,各取10μl混合后,置于PCR仪,65℃保温10min, 然后缓慢降温至室温,-20℃保存;
(2)序列导入、鉴定:
取PC89质粒DNA 32μl 30μg,加10×酶切buffer 4μl,10U/μl EcoRI 2 μl,10U/μl BamHI 2μl,37℃酶切2h,65℃20min灭活,2.5%琼脂糖电泳 观察结果;在紫外灯下迅速切下目的条带,用UNIQ210胶回收试剂盒回收;将回收后的 PC89DNA片段与双链寡聚核苷酸连接;连接反应体系:双链寡聚核苷酸4μl,PC89载 体DNA 4μl,10U/μl T4DNA ligase 1μl,10×T4 DNA ligation buffer 1μl, 总体积10μl,16℃连接过夜;连接液全量转化大肠杆菌感受态细胞,热激后涂布已 加入40μl 4mg/ml X-gal及4μl 40mg/ml ITPG的含Amp的LB平板,37℃培养 过夜,挑单菌落扩增细胞进行阳性克隆鉴定;
(3)高密度模拟表位蛋白的表达:
经鉴定后的阳性克隆挑单菌落接种于2ml Amp+Tet双抗SOC培养液中,37℃振 荡培养2h,转移至400ml Amp+Tet双抗SOC培养液中,37℃振荡培养至A600约 0.4时,加入1×1012PFU的VCSM13,37℃振荡培养1h,再加入终浓度为70mg/L 的卡那霉素以及终浓度为1mmol/L的ITPG,37℃振荡培养过夜;
(4)高密度模拟表位蛋白的纯化:
将培养液4℃10000rpm离心10min,上清液加入PEG/NaCl,4℃沉淀过夜;4℃ 10000rpm离心15min,去上清,再用1mL TBST悬浮噬菌体,加入PEG/NaCl冰上孵 育60min;4℃离心15min,去上清,沉淀用200μl TBST悬浮并测滴度,4℃保存。
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