[发明专利]针对PCDH10C端蛋白片段分子的特异性抗体的制备方法无效
| 申请号: | 200810060201.5 | 申请日: | 2008-03-31 |
| 公开(公告)号: | CN101255193A | 公开(公告)日: | 2008-09-03 |
| 发明(设计)人: | 朱永良 | 申请(专利权)人: | 浙江大学 |
| 主分类号: | C07K16/18 | 分类号: | C07K16/18;C12N15/12;C12N15/62;C12N15/70;C07K19/00 |
| 代理公司: | 杭州求是专利事务所有限公司 | 代理人: | 张法高 |
| 地址: | 310027*** | 国省代码: | 浙江;33 |
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| 摘要: | |||
| 搜索关键词: | 针对 pcdh10c 蛋白 片段 分子 特异性 抗体 制备 方法 | ||
技术领域
本发明涉及一种针对PCDH10C端蛋白片段分子的特异性抗体的制备方法。
背景技术
PCDH10是属于Ca2+依赖性钙粘蛋白超家族的一员,具有6个重复串联的胞外区和1个独特的胞内区。我们在对原代肿瘤干细胞基因表达谱时用病毒文库技术筛选时发现pcdh10-/-细胞易游出和穿过“Transwell”的半透膜,而pcdh10+/+的细胞迁移性较弱。通过生物信息学分析,进一步克隆了pcdh10的全长cDNA序列并构建了表达pcdh10的真核细胞表达载体,通过脂质体瞬时转染K562细胞、SW480大肠癌细胞发现异位表达PCDH10抑制了这些细胞在体外的增殖,并增加了细胞的凋亡。进一步发现对这些细胞进行无血清饥饿和添加化疗药物等处理后PCDH10表达水平随时间和浓度的增加而增加,提示PCDH10参与了细胞凋亡,可能是一个肿瘤抑制基因。然对其参与细胞凋亡的分子机制尚不明了。为探讨PCDH10在大肠癌组织中的表达改变,我们用1种针对PCDH10胞外区的单抗和多抗时发现PCDH10在大肠癌组织中并无明显的改变。而用针对C末端的引物进行PCR扩增时发现在大肠癌干细胞样细胞中出现了显著的转录下调,表明PCDH10在大肠癌细胞中出现了剪拼改变,PCDH10C端蛋白分子片段可能链接了1个独特的细胞信息转导通路,但目前尚未发现有针对PCDH10C端蛋白分子片段的特异性抗体。
发明内容
本发明的目的是提供一种研究PCDH10C端蛋白质功能的特异性抗体。
针对PCDH10C端蛋白片段分子的特异性抗体的制备方法包括如下步骤:
1)采用聚合酶链式反应技术直接从体外培养细胞株中将PCDH10C 3’端碱基序列克隆至原核细胞,构建PCDH10C端融合蛋白的原核细胞PCDH10C/pET15b表达载体;
2)将PCDH10C/pET15b表达载体转化BL21DE3pLysS大肠杆菌,建立PCDH10C端融合蛋白的原核细胞表达系统,用His金属螯和树脂纯化PCDH10C端融合蛋白,用Thrombin酶切除PCDH10C端融合蛋白N端的His-tag标签,得到PCDH10C端融合蛋白;
3)用已切除标签的PCDH10C端融合蛋白作为抗原免疫大白兔,产生抗PCDH10C端抗体,收集抗血清,用硫酸铵沉淀、透析、Protein A-Sepharose亲和柱纯化兔抗PCDH10C端抗体。
所述的采用聚合酶链式反应技术直接从体外培养细胞株中将PCDH10C 3’端碱基序列克隆至原核细胞,构建PCDH10C端融合蛋白的原核细胞表达载体的方法是:将表达PCDH10的1×105~×107人白血病K562细胞离心沉淀,加入0.5~1.5mlTrizol充分混匀,提取总RNA,再用逆转录酶逆转录RNA至cDNA;然后设计上游引物包含Nde I内切酶位点CATATG和下游引物包含BamH I内切酶位点GGATCC,通过PCR的方法直接将PCDH10C端DNA序列克隆至pET15b Nde I/BamH I位点,经Nde I和BamH I内切酶酶切鉴定合格后,进一步用DNA测序验证,合格即为PCDH10C/pET15b表达载体。
所述的将PCDH10C/pET15b表达载体转化BL21DE3pLysS大肠杆菌,建立PCDH10C端融合蛋白的原核细胞表达系统,用His金属螯和树脂纯化PCDH10C端融合蛋白,用Thrombin酶切除PCDH10C端融合蛋白N端的His-tag标签包括如下步骤:
1)取1~3μl鉴定合格的ΔPCDH10/pET15b重组质粒加至10~90μl感受态的BL21DE3pLysS大肠杆菌,冰浴15~45min,38~46℃60s,加入50~350μlLB液30~44℃30~90min,涂布含50~150μg/mL的LB平板,30~44℃培养过夜,次日,挑取菌落接种50~200mlLB液,37℃摇动培养过夜,接种2000~4000ml LB液,30~44℃扩大培养2~8h,加入终浓度为1~7mM的IPTG诱导0.5~6h,离心收集细菌沉淀。
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