[发明专利]一种基于蛋白质可逆固定的两步酶解鉴定方法有效
| 申请号: | 201510820527.3 | 申请日: | 2015-11-24 |
| 公开(公告)号: | CN105400855B | 公开(公告)日: | 2019-06-21 |
| 发明(设计)人: | 张祥民;刘一颖 | 申请(专利权)人: | 复旦大学 |
| 主分类号: | C12P21/06 | 分类号: | C12P21/06;G01N33/68 |
| 代理公司: | 上海正旦专利代理有限公司 31200 | 代理人: | 陆飞;盛志范 |
| 地址: | 200433 *** | 国省代码: | 上海;31 |
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| 摘要: | 本发明属于生物分析与检测技术领域,具体为一种基于蛋白质可逆固定的两步酶解鉴定方法。本发明首先在Fe3O4@PEG磁性纳米材料表面修饰醛基、环氧基和三氟乙磺酸酯基等活性基团,再在其外层键合上含有二硫键的基团,得到磁性纳米材料Fe3O4@PEG@ADC;然后采用两步酶解的策略:先用胰蛋白酶进行第一步酶切,使疏水性的膜蛋白暴露出亲水性的羧基;然后再进行还原烷基化,破坏未被酶切的肽段与材料之间的二硫键;从材料表面洗脱下来的残余肽段继续被Glu‑C酶解。实验证明,两步酶解策略对于特殊膜蛋白,如细菌视紫红质,具有很好的酶解效果,在复杂样品的膜蛋白组学研究中也有很好的结果。本发明实用高效,重复性好,稳定性高,在膜蛋白的大规模鉴定中有广阔的应用前景。 | ||
| 搜索关键词: | 酶解 膜蛋白 磁性纳米材料 可逆固定 二硫键 肽段 蛋白质 胰蛋白酶 检测技术领域 细菌视紫红质 还原烷基化 表面修饰 复杂样品 活性基团 酶解效果 生物分析 一步酶切 环氧基 亲水性 疏水性 乙磺酸 键合 酶切 醛基 洗脱 组学 羧基 酯基 暴露 应用 研究 | ||
【主权项】:
1.一种基于蛋白质可逆固定的两步酶解鉴定方法,其特征在于具体步骤如下:(1)通过一系列反应将半光胺和乙酰半胱氨酸中的两个巯基相连,形成由二硫键连接氨基与羧基而得到的化合物,记为ADC;(2)利用ADC的氨基与表面修饰有三氟乙磺酸酯基的磁性纳米材料Fe3O4@PEG‑tresyl进行反应,形成表面含有丰富羧基的新型磁性纳米材料,记为Fe3O4@PEG@ADC;(3)将膜蛋白键合到新型磁性纳米材料Fe3O4@PEG@ADC表面;(4)用胰蛋白酶进行第一步酶解,使疏水性的膜蛋白暴露出亲水性的羧基,然后再进行还原烷基化,破坏未被酶切的肽段与材料之间的二硫键,将材料表面的残余肽段洗脱下来;再进行第二步酶解,即选用活性位点为谷氨酸的Glu‑C进行残余肽段的酶解;所述形成化合物ADC的具体操作过程如下:把0.5~1.0 mL偶氮二甲基二乙酯和200~400 mg 半胱胺溶解在10~20 mL二氯甲烷溶剂中,氮气氛围中室温下过夜反应;将二氯甲烷蒸干,然后使用柱层析分离对产物进行提纯,去除水相中未反应的半胱胺;将所得中间产物重溶在3~6 mL四氢呋喃中,并加入200~400 mg乙酰半胱氨酸,在氩气中40~60°C反应48~72 h;经过柱色谱分离后便得到较纯的ADC;步骤(2)所述形成表面含有丰富羧基的新型磁性纳米材料Fe3O4@PEG@ADC的具体操作过程如下:将所得ADC重溶在1~2 mL乙腈中,转移到20~40 mL PBS 缓冲溶液中,超声使其分散均匀;加入1.0~2.0 g表面修饰有三氟乙磺酸酯基的磁性纳米材料 Fe3O4@PEG‑tresyl,在室温下过夜反应;再磁性分离,去除未反应ADC,加入封闭缓冲液,反应去掉多余的tresyl活性基团;反应0.5~1 h后,除去多余封闭缓冲液,然后分别用水、乙醇洗涤数次,即得到新型磁性纳米材料Fe3O4@PEG@ADC,烘干待用;步骤(3)所述将膜蛋白键合到新型磁性纳米材料Fe3O4@PEG@ADC表面的具体操作过程如下:使用EDC和NHS对Fe3O4@PEG@ADC磁性纳米材料表面的羧基进行活化:EDC和NHS按照1:1~2:1的比例溶解在1~2 mL MES缓冲溶液中,再加入10~20 mg Fe3O4@PEG@ADC磁性纳米材料,常温下活化0.5~1 h后磁性分离,去除多余的反应物;细菌视紫红质蛋白溶解在含有4%SDS的2‑(N‑吗啡啉)乙磺酸缓冲溶液(MES),配制成浓度为0.5~1.0 mg/mL的蛋白溶液;将Fe3O4@PEG@ADC磁性纳米材料重新分散在90~180 μLMES缓冲溶液中,并加入 10~20μL蛋白溶液,在30~40°C条件下,震荡反应2~3小时;步骤(4)所述进行两步酶解的具体操作过程如下:将所得材料经过充分洗涤后,重新分散在50~100 μLNH4HCO3溶液中,进行两步法酶解:第一步,加入1.0~2.0 μg Trypsin,30~40°C下过夜酶解;磁性分离后分别得到1号肽段样品;第二步,材料中加入10~20mM DTT溶液,在50~60°C下反应45 min~1 h,随即加入IAA至终浓度为25~50mM,在室温下避光反应0.5~1 h;磁性分离后得到还原烷基化的残余肽段,并加入0.5~1.0 μgGlu‑C,继续在37°C下过夜酶解,得到2号肽段样品;两个肽段样品冻干后进行RPLC‑MS/MS分离鉴定。
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