[发明专利]一种磁珠富集法开发菜豆SSR引物的制备方法有效

专利信息
申请号: 201110437094.5 申请日: 2011-12-23
公开(公告)号: CN102533727A 公开(公告)日: 2012-07-04
发明(设计)人: 汪爱华;周国林;林处发;丁毅;胡侦华;黄兴学;邓耀华;王斌才;姚芳 申请(专利权)人: 武汉市蔬菜科学研究所
主分类号: C12N15/10 分类号: C12N15/10;C12Q1/68
代理公司: 武汉宇晨专利事务所 42001 代理人: 王敏锋
地址: 430075 湖*** 国省代码: 湖北;42
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摘要: 发明公开了一种磁珠富集法开发菜豆SSR引物的制备方法,其步骤:首先用MseI对菜豆基因组DNA进行酶切,利用AFLP扩增原理创建文库;第二,基因组PCR文库与生物素标记的重复序列探针进行杂交;第三,通过对杂交混合液加入到表面包被有一层链霉亲和素的磁珠中;第四,将洗脱液纯化的微卫星DNA作为DNA模板,用PCR扩增方法使得微卫星DNA片断得到放大;第五,将纯化后的PCR扩增产物连接到T载体上克隆,得到插入片断的DNA序列;第六,重复核心区两侧设计引物,进行引物筛选,得到有效的微卫星位点。且简单易行,引物效率高,从48对引物中得到了20对有效的引物,为大批量的开发SSR引物提供保障。
搜索关键词: 一种 富集 开发 菜豆 ssr 引物 制备 方法
【主权项】:
一种磁珠富集法开发菜豆SSR引物的制备方法,包括下列步骤:A、菜豆基因组DNA的提取:选取菜豆品种,按照常规的栽培管理和肥水措施种植,小苗长出5‑6片叶子,取嫩叶0.4克利用CTAB法提取基因组DNA;B、提取基因组DNA浓度的检测:提取基因组DNA的浓度用分光光度计检测,进行SSR引物开发的基因组DNA浓度要达到100ng‑1ug/ul;C、酶切基因组DNA:用Mse I对菜豆基因组DNA进行酶切,利用AFLP扩增原理在酶切片断的两端加上单链寡核苷酸接头,并用与接头配套的接头引物进行PCR扩增放大,创建基因组PCR文库,对文库进行纯化;D、Mse I酶切片段加接头:酶切DNA产物用Mse I接头:接头序列Oligo‑MseI A5‑TACTCAGGACTCAT‑3’,Oligo‑Mse I B 5‑GACGATGAGTCCTGAG‑3’加T4 DNAligase进行连接,混匀后,置16℃恒温水浴锅温浴过夜,然后放在4℃冰箱中保存备用;E、酶切连接的PCR预扩增:以步骤D酶切连接好的产物为模板,以MseI‑N:5’‑GATGAGTCCTGAGTAAN‑3’为引物进行PCR扩增,反应条件:第一步1个循环,94℃5min,第二步18个循环,94℃1min,53℃1min,72℃1min,第三步1个循环72℃10min,4℃保存,反应产物使用1%W/V琼脂糖电泳检测;F、PCR预扩增产物与生物素探针杂交:在66‑70℃下使得PCR文库与所选用的生物素标记的重复序列探针进行杂交;磁珠的表面包被有一层链霉亲和素,生物素标记的探针与含重复序列单元的DNA片断杂交结合以后,通过洗涤过程并用磁场固定,在变性条件下含重复序列的微卫星DNA被TE缓冲液洗脱;将洗脱液纯化以后作为DNA模板;杂交体系总体积为100μL,总共平行配制2管分装,进行杂交,在PCR仪上进行,反应程序为95℃变性5min;杂交66‑70℃下保持1‑2h,杂交反应完毕后往反应体系中加入300μL TEN100溶液,混匀后置于4℃保存备用,将加有300μL TEN100的杂交混合液加入到经过预处理的磁珠中,室温上放置30min,然后对杂交的磁珠进行洗脱,SDS溶液于室温下洗涤磁珠3次,每次5min,三次漂洗后再用400μL预热至55℃的0.2×SSC+0.1%SDS溶液洗涤1次,加入50μL TE8.0,用移液器吸打均匀,然后于95℃下水浴5min,冻存于‑20℃,取得目的DNA片段,以洗脱产物为底物,以MseI‑N为引物,用纯化后的5μL目的DNA洗脱片段用于PCR扩增,扩增条件与上面的PCR预扩增条件一致,扩增30个循环;G、连接转化克隆:将纯化后的PCR扩增产物连接到T载体上进行克隆,操作依照pMD 18‑T载体连接,连接反应体系为10μL,连接条件为16℃1hr,于‑70℃冰箱中取出一管感受态细胞,置于冰浴中融化,加入5μL连接产物,冰浴30min,冰浴结束后42℃热激90sec,再冰浴5min,然后加入1mL预冷的液体LB培养基,于37℃的摇床上复苏培养45min,复苏培养结束后于4℃10000rpm离心1min,以沉淀细胞;去上清,剩余200‑300μL培养基重悬细胞,往每个LB平板上加入4μLIPTG和40μL X‑gal,涂布均匀,每100μL菌液涂一个平板,待液体吸收完毕后,将平板倒置于37℃过夜;H、阳性克隆的挑取、培养、筛选和测序:挑选阳性克隆用载体通用引物测序,得到的插入片断的DNA序列,挑选出微卫星DNA序列,将培养好的平板在4℃放置,使菌落显色,用无菌牙签挑取白色克隆到500μL液体培养基中,37℃摇床上以200rmp转速培养过夜,4℃保存菌液;取1μL菌液用于PCR模板,扩增条件为:95℃5min;94℃40s;54℃30s;72℃1min;循环30次;72℃7min。取2μL产物于1%W/V琼脂糖凝胶上电泳,用全自动凝胶成像分析系统记录电泳结果;将含有插入片段并且大小的阳性克隆取一半菌液测序,另一半加入20%V/V菌甘油,混匀后于‑70℃冻存备份,用M13+通用引物测序,测序在ABI 3730XL DNA Sequencer上进行,所用反应试剂为ABI PRISM BigDyeTM Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction Kit,每反应的有效长度达700‑800bp,用M13引物从另外一段进行测序,并将正反向测序结果进行拼接;J、序列分析和微卫星位点的分类与设计:用软件SSRHunter从得到的序列中查找出含有重复单元的微卫星序列,测序,根据Weber提出的标准将微卫星分为3类:完美型,指没有中断的或附近没有其它种类重复序列的重复序列;非完美型,指2个或以上的同种重复序列被3个碱基以下的非重复序列所间隔;复合型,指一种重复序列与其它种类的重复序列被3个以下的非重复序列所间隔,将挑选出的微卫星序列去除载体序列,在序列上标记出Mse I接头的位置,再用引物设计软件Primer Premier 5.0在两端接头和核心重复区域之间设计正向和反向PCR扩增引物,用于相应位点的PCR扩增;K、微卫星引物检验:对每个位点引物的有效性合多态性进行筛选,得到有效的微卫星位点,挑选两个DNA模板对所有合成的引物进行PCR扩增,退火温度使用设计引物时的默认温度为50‑62℃,微卫星PCR扩增反应体系为15μL,扩增条件为:94℃5min;94℃40s,Tm 30s,72℃40s,35cycles;72℃7min,PCR扩增产物按照5:1以体积比例加入上样缓冲液,95℃变性5分钟后置于冰上,在8%变性聚丙烯酰胺凝胶上加样检测,在上样的同时往其中一个加样孔加入0.1gPBR322/Msp I Marker,正常扩增的引物对用挑选出的DNA模板在退火50‑62℃下进行PCR扩增的结果在聚丙烯酰胺胶上电泳的结果读带,选择带型清晰,至少有两个或两个以上等位基因的引物筛选出来。
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