[发明专利]一种DC-CIK细胞的诱导活化试剂盒及其应用方法在审
| 申请号: | 201910099453.7 | 申请日: | 2019-01-31 |
| 公开(公告)号: | CN109722386A | 公开(公告)日: | 2019-05-07 |
| 发明(设计)人: | 杨光 | 申请(专利权)人: | 苏州明基医院有限公司 |
| 主分类号: | C12M3/00 | 分类号: | C12M3/00;C12M1/24;C12N5/0784;C12N5/0783 |
| 代理公司: | 暂无信息 | 代理人: | 暂无信息 |
| 地址: | 215011 江*** | 国省代码: | 江苏;32 |
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| 摘要: | |||
| 搜索关键词: | 试剂瓶 激活液 调制 诱导活化试剂盒 无血清培养液 培养细胞 统一标准 统一配置 诱导因子 培养基 混合液 试剂盒 放入 均一 内装 染菌 配制 应用 配置 | ||
1.一种DC-CIK细胞诱导活化的试剂盒,其特征在于,包含盒盖和盒体,该盒体内部设有一个海绵托,该海绵拖上设有六个固定孔,该六个固定孔内分别放置有内容调制CIK细胞因子激活液IL-2的试剂瓶、内容调制CIK细胞因子激活液CD3的试剂瓶、内容调制CIK细胞因子激活液IFN-γ的试剂瓶、内容调制DC细胞因子激活液IL-4和GM-CSF混合液的试剂瓶、内容调制DC细胞因子激活液TNF-α的试剂瓶、内容无血清培养液的试剂瓶。
2.根据权利要求1所述的DC-CIK细胞的诱导活化试剂盒,其特征在于,IL-2的浓度为500-1500U/ml,CD3的浓度为30-120ng/ml,IL-4和GM-CSF混合液的浓度为100-800U/ml,TNF-α的浓度为100-800U/ml,IFN-γ的浓度为400-1600U/ml。
3.根据权利要求1所述的DC-CIK细胞的诱导活化试剂盒,其特征在于,IL-4和GM-CSF混合液的浓度为500U/ml;和/或,IL-2的浓度为1000U/ml。
4.根据权利要求1所述的DC-CIK细胞的诱导活化试剂盒,其特征在于,CD3的浓度为100ng/ml。
5.根据权利要求1所述的DC-CIK细胞的诱导活化试剂盒,其特征在于,TNF-α的浓度为500U/ml。
6.根据权利要求1所述的DC-CIK细胞的诱导活化试剂盒,其特征在于,IFN-γ的浓度为1000U/ml。
7.一种DC-CIK细胞的诱导活化试剂盒的应用方法,用于DC-CIK细胞诱导活化的试剂盒,该试剂盒包括调制CIK细胞因子激活液IL-2、调制CIK细胞因子激活液CD3、调制CIK细胞因子激活液IFN-γ、调制DC细胞因子激活液IL-4和GM-CSF混合液、调制DC细胞因子激活液TNF-α、无血清培养液,其特征在于,该应用方法包括如下步骤:
抽外周血100ml,收集于四联血袋;
血液预处理:将所采集100ml外周血,置于2支50ml的离心管中,离心(500-1000g,10-35min),上清转移至50ml离心管待处理备用,下部的细胞作密度梯度离心分离PBMC(外周血单核细胞)用;
细胞的分离:血液预处理获得的下层细胞用生理盐水1:1稀释,混匀。将40ml淋巴细胞分离液等量均分放入50ml刻度离心管,将离心管中已稀释的细胞悬液等量均分沿管壁缓慢匀速加入离心管,滴加过程中注意用力均匀,避免破坏分离液-白细胞界面的完整性,离心(500-1000g,15-45min,离心机升降速调到最慢),离心后,管内液体分为三层,移液管弃去上层约15ml液体后吸取上、中层界面处白色云雾层狭窄带(即所需PBMC,约5ml)放入离心管,生理盐水洗2次(600g,8min)后弃上清,从试剂盒中取出无血清细胞培养基,每管40ml无血清细胞培养液重悬细胞分离所获得的PBMC;
接种细胞:将40ml PBMC细胞悬液加入细胞培养瓶1,置饱和湿度、37℃、3.0%-10%CO2条件下培养。2小时后,收集悬浮细胞,并用无血清培养液调整细胞浓度到1X106/ml,在其中加入IFN-γ培养(400-1600U/ml)。24小时后,从试剂盒中取出细胞因子激活液IL-2(500-1500U/ml)和CD3(30-120ng/mL)各40μl,用于CIK细胞诱导;向细胞培养瓶1中的贴壁细胞加入20ml DC细胞诱导因子IL-4和GM-CSF(100-800U/ml)混合液,用于DC细胞诱导培养;
培养至第三天,补加无血清细胞培养液40ml,40μl细胞因子激活液IL-2(500-1500U/ml)至培养瓶使培养液总体积为80ml;
培养至第四天,CIK细胞:使用50ml医用注射器将每个培养瓶中细胞悬液等量均分转入2个细胞培养袋,加入无血清细胞培养液(≥400ml/袋)和细胞因子激活液IL-2,使细胞终浓度约为1×105cells/ml,IL-2终浓度为500IU/ml,置饱和湿度、37℃、5.0%CO2培养。DC细胞:培养至第四天,向DC细胞培养瓶中加入10ul DC细胞诱导因子IL-4和GM-CSF(100-800U/ml)混合液;
培养至第6天,CIK细胞:每袋添加细胞因子激活液IL-2,使其终浓度为500IU/ml。DC细胞:加入肿瘤抗原5ul;
培养至第7天,DC细胞:加入DC细胞诱导因子TNF-α(100-800U/ml),10ul;
培养至第8天,将1/2的DC细胞冻存为2份,分别标示为DC疫苗1、DC疫苗2,剩余DC细胞与CIK细胞共培养并向其中添加1.5倍的无血清细胞培养液和相应的细胞因子激活液IL-2(终浓度为50IU/ml),并计数。抽取5ml/袋,详细填写好验单项目后,送检验科做真菌、细菌检测;
第10天,每袋细胞添加0.5倍的无血清细胞培养液和相应的细胞因子激活液IL-2(终浓度为50IU/ml),计数并取样做细菌、真菌、内毒素、支原体检测,确认检测结果合格后,回输DC-CIK;
第12天,每袋细胞添加0.5倍的无血清细胞培养液和相应的细胞因子激活液IL-2(终浓度为50IU/ml),计数并取样做细菌、真菌、内毒素、支原体检测,确认检测结果合格后,回输DC-CIK;
第14天,详细观察细胞生长状态后,随机均匀抽样5ml,台盼蓝染色法计数活细胞、死细胞总数量,同时取样做淋巴细胞表面标记检测;并确认细胞悬液细菌、真菌涂片、支原体及内毒素检测为阴性后,回输DC-CIK及DC疫苗2。收集细胞约4000ml,离心(1500rpm,8min),洗液(含有0.2%人白蛋白的注射用生理盐水)洗涤(1500rpm,8min)2次,洗液按照500ml生理盐水、50万IU的IL-2、5ml 20%人血清白蛋白的配比,重悬细胞,将其装入细胞回输袋用热合机将管口热合封闭,并留样封存。
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